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GUIA CULTIVO HONGOS Psilocybe cubensis & Panaeolus cyanescens 16 capitulos * 7 bloques * Orden logico de aprendizaje |
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BLOQUE 0 |
BLOQUE 1 |
BLOQUE 2 |
BLOQUE 3 |
BLOQUE 4 |
BLOQUE 5 |
BLOQUE 6 |
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Antes de empezar |
Propagacion |
Proceso cultivo |
Problemas |
Tec. intermedias |
Tec. avanzadas |
Especies |
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01 Glosario 02 Setup 03 Cepas |
04 Sello->Jeringa 05 LC |
06 Esterilizacion 07 P.cubensis 08 Tips |
09 Problemas |
10 G2G 11 Preservacion LC |
12 Agar+Clonacion |
13 Cyanescens 14 Natalensis 15 Azurescens 16 Secado |
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D.F.F.G * Guia de caracter informativo y educativo sobre micologia |
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BLOQUE 0 Antes de Empezar
Glosario * Setup * Eleccion de cepa |
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01
GLOSARIO DE TERMINOS Todos los terminos tecnicos ordenados alfabeticamente |
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CAPITULO 01 GLOSARIO DE TERMINOS
Todos los terminos tecnicos de la guia ordenados alfabeticamente
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D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos |
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C |
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CV |
Coco + Vermiculita. Sustrato base compuesto por fibra de coco hidratada y vermiculita, principal sustrato bulk para P. cubensis. |
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D |
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Dextrosa |
Monosacarido (azucar simple) usado como fuente de carbono en medios de cultivo como el PDA. |
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E |
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Endospora |
Estructura de resistencia producida por ciertas bacterias (Bacillus spp.) que soporta hasta 100 C durante horas. Solo se destruyen a 121 C a presion. |
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Espora |
Unidad reproductiva del hongo. Contiene el material genetico para iniciar un nuevo micelio. En hongos psilocibios son de color negro-violaceo. |
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Esporulacion |
Proceso de produccion y liberacion masiva de esporas por parte de los carpoforos maduros. |
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Esterilizacion |
Eliminacion total de todos los microorganismos viables incluyendo endosporas. Requiere 121 C a 15 PSI en olla a presion. |
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Extracto de malta |
Producto derivado de la cebada malteada, rico en azucares y aminoacidos. Usado como fuente nutritiva en medios de agar (MEA). |
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F |
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FAE (Fresh Air Exchange) |
Intercambio de aire fresco. Proceso de renovar el aire del contenedor para reducir el CO2 acumulado y aportar oxigeno fresco. |
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Flush |
Tanda de cosecha. Oleada de carpoforos producida por el bloque colonizado. Un bloque produce 2-4 flushes antes de agotarse. |
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Flujo laminar |
Dispositivo que filtra el aire mediante filtros HEPA creando una corriente de aire esteril. Alternativa profesional al SAB. |
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Frente activo |
Zona del borde exterior del micelio donde las hifas mas jovenes y vigorosas estan expandiendose. Zona ideal para transferencias. |
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Fruiting trigger |
Conjunto de cambios ambientales que senalizan al micelio que es momento de fructificar. |
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G |
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G1, G2, G3… |
Generaciones sucesivas en el proceso G2G. G1 es el primer grano inoculado desde esporas o LC, G2 es grano inoculado desde G1, etc. |
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G2G (Grain to Grain) |
Tecnica de transferencia de micelio de un frasco de grano colonizado a frascos nuevos de grano esteril para multiplicar el spawn. |
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Genotipo |
Composicion genetica completa de un organismo. Cada espora tiene un genotipo unico; el tejido clonado mantiene el genotipo exacto del donante. |
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Grano maestro (Master jar) |
Frasco G1 reservado como fuente para producir G2, manteniendo siempre una reserva de la genetica original. |
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H |
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Hifa |
Filamento microscopico tubular que es la unidad basica estructural del micelio. El conjunto de hifas forma la red miceliar visible. |
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Higrometro |
Instrumento para medir la humedad relativa del aire. Imprescindible para monitorear las condiciones de la camara de fructificacion. |
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HR (Humedad Relativa) |
Porcentaje de vapor de agua presente en el aire respecto al maximo posible a esa temperatura. Expresada en %. |
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I |
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Inoculo |
Material vivo (esporas, LC, micelio en grano o agar) usado para iniciar un cultivo nuevo. |
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L |
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Laminillas |
Estructura laminar en la parte inferior del sombrero donde se producen y almacenan las esporas. Su patron forma el sello de esporas. |
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LC |
Ver Cultivo liquido. |
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M |
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MEA (Malt Extract Agar) |
Medio de cultivo en agar preparado con extracto de malta. El mas usado para trabajo con hongos psilocibios. |
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Micelio |
Red de hifas que constituye el cuerpo vegetativo del hongo. La parte blanca y algodonosa que coloniza el sustrato. |
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Micelio rizomorfoso |
Micelio con morfologia de cordones gruesos y definidos. Generalmente indica crecimiento vigoroso y genetica activa. |
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Micotoxina |
Toxina producida por ciertos hongos (principalmente Aspergillus spp.) danina si se inhala o ingiere. |
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Moho |
Termino coloquial para hongos filamentosos contaminantes como Trichoderma, Penicillium y Aspergillus. |
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Monotub |
Contenedor de plastico con tapa que funciona como contenedor de bulk y camara de fructificacion simultaneamente. |
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Multispore |
Inoculacion iniciada a partir de esporas sin aislar, resultando en multiples genotipos distintos. |
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O |
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Overlay |
Capa densa de micelio aereo en la superficie del bulk cuando el FAE es insuficiente, impidiendo la formacion de pins. |
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P |
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Parafilm |
Pelicula de cera flexible usada para sellar bordes de placas Petri. Semipermeable al oxigeno pero barrera para contaminantes. |
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Pasteurizacion |
Tratamiento termico a 80-82 C que elimina la mayoria de patogenos y mohos pero preserva las endosporas bacterianas beneficiosas. |
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PDA (Potato Dextrose Agar) |
Medio de cultivo en agar preparado con extracto de patata y dextrosa. El mas nutritivo, usado para clonacion de tejido. |
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Perlita |
Material volcanico expandido con alta porosidad. Absorbe agua y la libera lentamente, usado como reservorio pasivo de humedad. |
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PF Tek |
Tecnica de cultivo en pasteles de harina de arroz integral y vermiculita, desarrollada por Robert McPherson. |
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pH |
Escala que mide la acidez o alcalinidad. Rango 0-14, neutro en 7. El casing optimo para P. cubensis es pH 7-7.5. |
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Pin / Primordio |
Fase inicial del carpoforo. Pequeno punto blanco que emerge del sustrato y se desarrollara en cuerpo fructifero maduro. |
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Pinning |
Proceso de formacion de primordios. El momento en que aparecen los primeros pins en la superficie del bloque. |
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Placa Petri |
Recipiente circular de plastico o vidrio de boca ancha y baja altura, usado para preparar y trabajar con medios de agar. |
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Polyfill |
Material sintetico de relleno que actua como filtro de aire transpirable. Alternativa al algodon para tapas de frascos y agujeros de FAE. |
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PSI (Pounds per Square Inch) |
Unidad de presion. 15 PSI es la presion de trabajo de una olla a presion domestica, suficiente para alcanzar 121 C. |
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Psilocibina |
Principal alcaloide psicoactivo de los generos Psilocybe y Panaeolus. Prodroga que se convierte en psilocina en el organismo. |
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Psilocina |
Metabolito activo de la psilocibina. Menos estable quimicamente, se oxida con facilidad (reaccion de azulado). |
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R |
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Ratio |
Proporcion entre dos cantidades. En cultivo expresa la relacion spawn:bulk (ej. 1:3 = una parte de spawn por tres de bulk). |
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Reproduccion vegetativa |
Reproduccion sin intervencion sexual, produciendo organismos geneticamente identicos al progenitor. |
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S |
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SAB (Still Air Box) |
Caja de plastico con agujeros para los brazos que crea un volumen de aire quieto para trabajar con bajo riesgo de contaminacion. |
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Sello de esporas |
Deposicion natural de esporas sobre papel de aluminio creando el patron radial de las laminillas. Metodo de conservacion genetica. |
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Senescencia |
Proceso de envejecimiento del micelio con las generaciones sucesivas, manifestado como reduccion progresiva del vigor. |
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SGFC (Shotgun Fruiting Chamber) |
Camara de fructificacion casera con caja de plastico perforada con agujeros de 6mm y perlita humeda en el fondo. |
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Silica gel |
Agente desecante (dioxido de silicio poroso) que absorbe la humedad. Usado para secar hongos y mantenerlos secos en conservacion. |
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Spawn |
Material de siembra. El grano colonizado con micelio usado para inocular el sustrato bulk. |
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Sustrato |
Material nutritivo sobre el cual crece el micelio. Puede ser grano, CV, estiercol, paja o agar. |
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T |
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Termostato |
Dispositivo que regula automaticamente la temperatura activando o desactivando la fuente de calor segun la sonda. |
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Turba de musgo (Sphagnum) |
Material organico derivado de musgo parcialmente descompuesto. Usado en mezclas de casing por su retencion de humedad. |
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V |
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Velo parcial |
Membrana fina que conecta el borde del sombrero con el tallo en hongos jovenes. Su rotura indica madurez y momento optimo de cosecha. |
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Vermiculita |
Mineral de silicato expandido por calor con estructura laminar que retiene humedad. Usado en sustratos CV y como casing. |
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W |
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WA (Water Agar) |
Agar sin nutrientes preparado solo con agua destilada y agar en polvo. Usado para germinacion inicial y aislamiento. |
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02
SETUP COMPLETO DE CULTIVO SAB * Camara de fructificacion * Temperatura * Humedad * FAE |
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CAPITULO 02 SETUP COMPLETO DE CULTIVO
SAB * Camara de fructificacion * Temperatura * Humedad * FAE * Luz
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D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos |
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PARTE 1 – El SAB (Still Air Box) |
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El SAB es el entorno de trabajo mas accesible y efectivo para el cultivador domestico. Funciona por un principio fisico simple: en un volumen de aire completamente quieto, las particulas pesadas (esporas de contaminantes) se depositan en el fondo en lugar de flotar y llegar al material esteril. |
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1 |
Desinfectar el interior Alcohol isopropilico en toda la superficie interior. Dejar secar. |
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2 |
Introducir todo el material Frascos, jeringas, placas – todo dentro antes de empezar. |
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3 |
Esperar 20-30 minutos Sin tocar. El aire interior debe calmarse completamente. Este es el paso mas ignorado y el mas importante del SAB. |
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4 |
Trabajar con movimientos lentos Introduce los brazos despacio. Sin movimientos bruscos que generen corrientes dentro del SAB. |
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PARTE 2 – Control de Temperatura |
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Especie |
Colonizacion |
Fructificacion |
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P. cubensis |
23-26 C |
18-23 C |
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P. cyanescens |
28-30 C |
23-26 C |
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Opciones para mantener temperatura de colonizacion |
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Metodo |
Como funciona |
Coste |
Nota critica |
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Mat de calor para reptiles |
Coloca los frascos encima. Calienta desde abajo. |
10-20 EUR |
OBLIGATORIO usar termostato – sin el alcanza 35-40 C. |
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Camara de polispan con bombilla |
Caja de corcho blanco con bombilla de bajo consumo dentro. |
5-10 EUR |
Pon termometro dentro para verificar temperatura. |
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Habitacion calida |
Si la casa esta a 23-25 C de forma estable. |
Cero |
Solo valido para P. cubensis. No para P. cyanescens. |
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Mat de calor sin termostato: temperatura incontrolada que oscila entre 28-40 C. El micelio muere por calor. El termostato es obligatorio. |
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PARTE 3 – La Camara de Fructificacion |
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La camara de fructificacion necesita mantener simultaneamente alta humedad y buen intercambio de aire. |
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Opcion A |
Shotgun Fruiting Chamber (SGFC) |
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Material: |
Caja plastico transparente grande (min 60x40x40 cm) + taladro broca 6mm + perlita. |
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Construccion: |
Perfora la caja con agujeros de 6mm en cuadricula de 5×5 cm en paredes, fondo y tapa. Pon 5-7 cm de perlita humeda en el fondo. Coloca contenedores encima. Humedece perlita y paredes 1-2 veces al dia. |
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Ventajas: |
La mas popular para casero. Simple, sin electricidad adicional. FAE pasivo garantizado por los agujeros. Barata. |
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Limites: |
Dificil controlar HR con precision. Requiere pulverizacion manual diaria. |
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Opcion B |
Martha Tent |
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Material: |
Mini invernadero de tela (60-100 EUR) + humidificador ultrasonico frio + temporizador de enchufe + ventilador USB + higrometro. |
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Construccion: |
Humidificador nebuliza segun temporizador (15 seg cada 3-4 min). Ventilador en parte superior extrae CO2. Higrometro controla que la HR se mantenga en rango. |
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Ventajas: |
Control preciso de HR. Escalable para varios bloques. Minima intervencion manual con temporizador. |
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Limites: |
Mayor coste inicial. Humidificador necesita agua destilada obligatoria (el agua dura calcifica el difusor). |
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Opcion C |
Monotub |
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Material: |
Caja plastico opaca grande con tapa (60L o mas) + polyfill. |
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Construccion: |
Perfora 6-8 agujeros de 5 cm en los laterales a media altura. Rellena con polyfill. El bulk colonizado fructifica directamente dentro. |
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Ventajas: |
Sistema todo-en-uno. Minima manipulacion. Excelente para principiantes con P. cubensis. |
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Limites: |
Menos control sobre HR. No apto para P. cyanescens que necesita HR del 95-98%. |
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PARTE 4 – Control de Humedad |
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Fase |
P. cubensis |
P. cyanescens |
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Colonizacion bulk |
No relevante (tapa cerrada) |
No relevante |
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Fructificacion |
90-95% |
95-98% (critico) |
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Un higrometro digital es imprescindible – coste 5-15 EUR. Los analogicos tienen errores de +/-10-15%. |
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Tecnica |
HR conseguida |
Coste |
Esfuerzo |
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Perlita humeda en SGFC |
85-92% |
Muy bajo |
Rellenar cada 2-3 dias |
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Pulverizacion manual de paredes |
+5-8% sobre base |
Cero |
2 veces al dia |
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Humidificador ultrasonico |
90-98% controlado |
Medio |
Minimo con temporizador |
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Tapa casi cerrada (monotub) |
92-96% |
Cero |
Sin intervencion |
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PARTE 5 – Control de CO2 y FAE |
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El micelio produce CO2 al respirar. En concentraciones altas inhibe la formacion de pins y produce tallos largos y caps pequenos. |
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Tipo de FAE |
Como funciona |
Suficiente para |
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FAE pasivo |
Agujeros con polyfill o perlita – intercambio continuo sin intervencion. |
P. cubensis en monotub o SGFC. |
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FAE activo manual |
Abrir 2-4 veces al dia durante 30-60 segundos. |
P. cyanescens y setups sin agujeros. |
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FAE activo con ventilador |
Ventilador programado con temporizador extrae CO2 continuamente. |
Martha tent. Control preciso. |
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El equilibrio HR-FAE: ventilar baja la HR. Solucion: FAE breve y frecuente en lugar de largo y espaciado, y pulverizar inmediatamente despues de cada ventilacion. |
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PARTE 6 – Luz |
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Fase |
Necesidad |
Fuente valida |
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Colonizacion grano y bulk |
Ninguna – oscuridad total |
Cualquier lugar oscuro |
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Fructificacion |
Luz indirecta 12 h/dia |
Lampara de escritorio, luz ambiente, luz natural filtrada |
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Luz directa de sol: seca el ambiente y sube la temperatura. Oscuridad total en fructificacion: no mata el cultivo pero reduce y desorienta los pins. |
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Resumen del Setup Minimo Funcional |
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ZONA ESTERIL |
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• SAB casero (caja plastico + 2 agujeros) + alcohol isopropilico + mechero • Suficiente para todo el trabajo esteril |
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COLONIZACION |
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• Mat de calor de reptilario + termostato de enchufe con sonda • Control de temperatura 23-30 C segun especie |
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FRUCTIFICACION BASE |
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• SGFC (caja con agujeros + perlita) + higrometro digital + pulverizador • Setup funcional para produccion continua de P. cubensis |
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UPGRADE OPCIONAL |
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• Mini tent + humidificador ultrasonico + temporizador • Control automatizado de HR sin intervencion diaria. Necesario para P. cyanescens |
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Errores Frecuentes de Setup |
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SAB sin esperar el tiempo de reposo |
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Trabajar con el aire aun en movimiento anula el beneficio del SAB. Los 20-30 minutos de reposo son el paso mas importante. |
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Mat de calor sin termostato |
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Sin control la temperatura oscila entre 28 y 40 C. El micelio muere por encima de 35 C. El termostato es obligatorio, no opcional. |
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Humidificador de calor en lugar de frio |
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El humidificador de calor levanta la temperatura de la camara. Solo usar ultrasonico. |
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No medir la HR |
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Sin higrometro es imposible saber si la HR esta en el rango correcto. |
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Ventilacion excesiva |
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Ventilar demasiado o con corrientes directas seca el ambiente. FAE breve y frecuente, no prolongado. |
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03
CEPAS DE PSILOCYBE CUBENSIS GT * B+ * PE * Albino A+ * Transkei * Ecuadorian * Mazatapec |
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CAPITULO 03 CEPAS DE PSILOCYBE CUBENSIS
GT * B+ * PE * Albino A+ * Transkei * Ecuadorian * Mazatapec * Comparativa
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D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos |
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Golden Teacher (GT) |
La referencia * Primera cepa recomendada |
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Velocidad colonizacion |
Rapida |
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Rendimiento |
Alto |
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Tamano carpoforos |
Grande a muy grande |
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Facilidad de cultivo |
MUY ALTA – coloniza bien en amplia gama de condiciones |
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Velocidad de pinning |
Media-rapida |
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Potencia relativa |
Media |
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Morfologia |
Sombrero dorado a marron claro. Tallos largos y gruesos. Carpoforos de gran tamano de forma consistente. |
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Para quien: |
Primera cepa para cualquier cultivador. Ideal para aprender el proceso completo. |
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B+ (B Plus) |
La mas grande * Segunda cepa recomendada tras GT |
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Velocidad colonizacion |
Rapida |
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Rendimiento |
Alto |
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Tamano carpoforos |
Grande a muy grande |
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Facilidad de cultivo |
MUY ALTA |
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Velocidad de pinning |
Media-rapida |
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Potencia relativa |
Media |
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Morfologia |
Sombrero marron claro a dorado. Tallos largos y gruesos. Carpoforos de gran tamano de forma consistente. |
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Para quien: |
Segunda cepa recomendada tras GT. Ideal para maximizar rendimiento. |
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Transkei (TAT) |
La mas rapida * Ciclos cortos y pinning denso |
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Velocidad colonizacion |
MUY RAPIDA |
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Rendimiento |
Medio-alto |
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Tamano carpoforos |
Pequeno-medio pero en densidades muy altas |
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Facilidad de cultivo |
Alta |
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Velocidad de pinning |
MUY RAPIDA – racimos densos |
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Potencia relativa |
Media-alta |
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Morfologia |
Carpoforos mas pequenos que GT producidos en densidades muy altas. Sombrero naranja-marron con umbo central. |
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Para quien: |
Cultivadores que quieren ciclos rapidos y cosechas frecuentes. |
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Albino A+ (AA+) |
Variante albina * Pinning denso y estetica diferenciada |
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Velocidad colonizacion |
Media-rapida |
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Rendimiento |
Medio |
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Tamano carpoforos |
Medio – sombreros mas pequenos que GT |
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Facilidad de cultivo |
Media |
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Velocidad de pinning |
Rapida – pinning muy denso |
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Potencia relativa |
Media-alta |
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Morfologia |
Carpoforos blancos o crema sin pigmentacion marron. Azulado muy pronunciado al manipularlos. |
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Para quien: |
Cultivadores con experiencia basica que quieren variedad visual. |
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Ecuadorian |
Origen andino * Tolerante a temperaturas bajas |
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Velocidad colonizacion |
Lenta-media |
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Rendimiento |
Medio |
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Tamano carpoforos |
Grande – tallos notablemente largos |
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Facilidad de cultivo |
Media-alta |
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Velocidad de pinning |
Media |
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Potencia relativa |
Media |
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Morfologia |
Tallos notablemente largos y finos. Sombreros medianos marron-canela. |
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Para quien: |
Cultivadores sin control de temperatura estable – tolera 20-22 C mejor que otras. |
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Mazatapec |
Origen mexicano * Robustez y consistencia |
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Velocidad colonizacion |
Lenta |
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Rendimiento |
Medio |
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Tamano carpoforos |
Medio-grande |
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Facilidad de cultivo |
Media |
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Velocidad de pinning |
Lenta pero consistente |
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Potencia relativa |
Media – experiencia considerada mas espiritual |
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Morfologia |
Sombrero marron oscuro, ondulado. Tallo delgado. Carpoforos elegantes. |
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Para quien: |
Cultivadores interesados en la dimension espiritual ademas del rendimiento. |
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Penis Envy (PE) |
La mas potente * Solo para cultivadores con experiencia |
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Velocidad colonizacion |
LENTA – micelio fino y rizomorfoso |
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Rendimiento |
Bajo-medio |
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Tamano carpoforos |
Medio – muy densos y carnosos |
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Facilidad de cultivo |
BAJA – requiere experiencia previa |
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Velocidad de pinning |
Lenta y poco predecible |
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Potencia relativa |
MUY ALTA – estimado 2-3x por encima de GT |
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Morfologia |
Sombrero pequeno y convexo. Tallo muy grueso. Sin umbo. Sin velo en muchos ejemplares. |
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Para quien: |
Cultivadores con experiencia demostrada en 3+ ciclos exitosos con otras cepas. |
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Tabla Comparativa – Resumen de todas las cepas |
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Cepa |
Velocidad |
Rendimiento |
Dificultad |
Potencia |
Para quien |
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GT |
Rapida |
Alto |
MUY BAJA |
Media |
Primera cepa siempre |
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B+ |
Rapida |
Alto |
MUY BAJA |
Media |
Maximizar rendimiento |
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Transkei |
MUY RAPIDA |
Medio-alto |
Baja |
Media-alta |
Ciclos rapidos |
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Albino A+ |
Media-rapida |
Medio |
Media |
Media-alta |
Estetica unica |
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Ecuadorian |
Lenta-media |
Medio |
Media-alta |
Media |
Sin control temperatura |
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Mazatapec |
Lenta |
Medio |
Media |
Media |
Experiencia espiritual |
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Penis Envy |
LENTA |
Bajo-medio |
BAJA |
MUY ALTA |
Cultivadores expertos |
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BLOQUE 1 Propagacion
Sello de esporas * Del sello a la jeringa * Cultivo liquido |
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04
DEL SELLO A LA JERINGA Proceso completo * Sello * Lectura * Conservacion * Jeringa |
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CAPITULO 04 DEL SELLO DE ESPORAS A LA JERINGA
Proceso completo * Sello * Lectura * Conservacion * Jeringa de esporas diluidas
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D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos |
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Este capitulo cubre el flujo completo e inseparable: hacer el sello de esporas del ejemplar donante y convertirlo en una jeringa de esporas lista para inocular. Son dos pasos del mismo proceso – el sello no tiene utilidad sin la jeringa. |
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PARTE 1 – Hacer el Sello de Esporas |
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Eleccion del ejemplar donante |
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Criterio |
Por que importa |
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Velo recien roto o rasgandose por los bordes |
Momento optimo de madurez esporogonica. Esporas maduras y abundantes. |
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Sombrero empezando a aplanarse pero aun convexo |
El momento exacto: esporas maduras, aun no dispersadas. |
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Sin signos de contaminacion |
Cualquier mancha verde o amarilla contamina el sello entero. |
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Primer o segundo flush |
Los primeros flushes dan ejemplares con mayor vigor genetico. |
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Tallo firme, sombrero intacto |
El dano fisico altera la deposicion del patron. |
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Demasiado pronto (velo intacto): esporas inmaduras, sello vacio. Demasiado tarde (polvo negro en sustrato): la mayoria ya deposito. El momento exacto es cuando el velo se esta rasgando por los bordes. |
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Material necesario |
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Material |
Especificacion |
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Papel de aluminio grueso |
Cuadrados de 15×15 cm. No papel – se pega al sello. |
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Vaso o bol de cristal |
Boca ancha. Limpio y desinfectado con alcohol. |
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Alcohol isopropilico 70% |
Para desinfectar superficie, vaso y aluminio. |
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Guantes de nitrilo |
Obligatorio. No tocar el sombrero con piel desnuda. |
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Bisturi o tijeras limpias |
Para separar sombrero del tallo. |
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Bolsas zip pequenas |
Para conservar cada sello por separado. |
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Silica gel |
Para conservacion a largo plazo. Farmacia o Amazon. |
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1 |
Preparar el entorno Limpiar superficie con alcohol. Dejar secar – el alcohol humedo inhibe la deposicion. Desinfectar el vaso por dentro y por fuera. Cortar cuadrados de aluminio y pasar algodon con alcohol por la cara receptora. Dejar secar. |
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2 |
Separar el sombrero Con bisturi desinfectado, cortar el tallo lo mas cerca posible del sombrero. Manipular el sombrero por los bordes, nunca por las laminillas. |
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3 |
Colocar sombrero boca abajo Laminillas en contacto directo con el aluminio. Centrar dejando margen por todos los lados. |
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4 |
Cubrir con el vaso Vaso boca abajo encima del sombrero. Crea microambiente humedo que facilita la deposicion y evita que corrientes de aire dispersen las esporas. |
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5 |
Deposicion – 4-24 horas Para sellos densos: 8-12 horas. El tiempo afecta a la densidad del sello. |
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6 |
Retirar el sombrero y sellar inmediatamente Levantar el vaso, retirar el sombrero con movimiento suave y vertical. Doblar el aluminio sobre si mismo de forma que la zona del sello quede completamente cubierta. |
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Como leer un sello de esporas |
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Aspecto del sello |
Interpretacion |
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Denso, negro intenso, patron radial claro |
Ejemplar maduro. Esporas abundantes. Excelente. |
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Fino, gris-violaceo |
Ejemplar algo inmaduro o pequeno. Usable. |
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Casi invisible |
Inmaduro o agotado. Pobre viabilidad. |
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Manchas de colores (verde, amarillo) |
Contaminado. Desechar sin abrir. |
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Conservacion del sello |
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Lugar |
Duracion |
Nota |
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Nevera (4 C), oscuridad |
6-12 meses |
Optimo. |
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Temperatura ambiente, oscuridad |
1-3 meses |
Aceptable si no tienes nevera. |
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Congelador con silica seca |
2-5+ anos |
Optimo para biblioteca genetica larga. |
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PARTE 2 – De Sello a Jeringa de Esporas |
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La jeringa de esporas es el puente entre el sello (la conservacion) y el cultivo. Las esporas del sello se suspenden en agua destilada esteril creando un inoculo liquido listo para inocular grano. |
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Material necesario |
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Material |
Especificacion |
Donde conseguirlo |
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Sello de esporas seco |
El que acabas de hacer o uno conservado. |
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Agua destilada |
Sin cloro. La del supermercado para plancha vale. |
Supermercado – 1 EUR |
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Jeringa 10-20 ml con aguja |
Esteril. Las de farmacia van bien. |
Farmacia |
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Frasco de cristal 50-100 ml |
Para esterilizar el agua. |
Cualquier frasco de conserva |
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Olla a presion o cazo |
Para esterilizar el agua. |
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Alcohol isopropilico 70% y mechero |
Desinfeccion y flameado. |
Farmacia |
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SAB |
Still Air Box o zona sin corrientes. |
Caja de plastico grande con dos agujeros. |
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1 |
Esterilizar el agua Agua en frasco de cristal tapado con aluminio. Olla a presion 121C/15 min – o hervir 20 minutos tapado en cazo. Enfriar COMPLETAMENTE antes de usar – minimo 12 horas. El agua caliente mata las esporas en el momento. |
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2 |
Preparar el SAB Desinfectar el interior con alcohol. Dejar secar 5 minutos. Introducir todo el material dentro. Esperar 20-30 minutos sin tocar. |
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3 |
Cargar agua en la jeringa Flamear la aguja hasta rojo. Enfriar 10-15 seg tocando el cristal del frasco. Aspirar 10-15 ml de agua destilada esteril fria. |
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4 |
Abrir el sello Abrir el papel de aluminio con cuidado. No tocar la zona con esporas aunque lleves guantes. |
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5 |
Rascar las esporas Con la punta de la aguja rascar suavemente una zona pequena del sello. Las esporas (polvo negro-violaceo) quedan adheridas a la punta. |
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6 |
Disolver en el agua Introducir la aguja en el agua dentro de la jeringa. Agitar con movimientos circulares suaves. El agua quedara ligeramente turbia o con particulas visibles. |
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7 |
Sellar y reposar Poner el capuchon esteril en la aguja. Etiquetar: especie, cepa, fecha y origen del sello. Reposar 24-48 horas en nevera antes del primer uso. |
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Errores Frecuentes |
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Sombrero cosechado demasiado pronto |
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Esporas inmaduras. Sello escaso o completamente vacio. El error mas comun. |
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No cubrir con vaso |
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Las corrientes de aire dispersan las esporas antes de depositarse. Patron irregular. |
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Aluminio sin desinfectar |
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Bacterias del ambiente quedan en el sello y lo contaminan durante el almacenamiento. |
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No secar antes de guardar |
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La humedad del sello fresco genera moho durante el almacenamiento. Secar 30-60 min antes de doblar y guardar. |
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05
CULTIVO LIQUIDO (LC) 6 medios nutritivos * Preparacion * Inoculacion * Incubacion * Lectura |
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CAPITULO 05 CULTIVO LIQUIDO (LC)
6 medios nutritivos * Preparacion * Inoculacion * Incubacion * Lectura
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D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos |
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Jeringa de esporas |
Cultivo liquido (LC) |
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Contenido |
Esporas sin germinar |
Micelio activo y verificado |
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Tiempo hasta colonizacion visible |
7-14 dias |
3-7 dias |
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Viabilidad garantizada |
No – las esporas pueden no germinar |
Si – ves el micelio antes de usar |
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Riesgo contaminacion |
Mayor – germinacion lenta |
Menor – coloniza rapido |
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Verificacion previa al uso |
Imposible |
Si – grumos visibles a contraluz |
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Coste por uso |
Bajo |
Muy bajo tras la primera preparacion |
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PARTE 1 – Los Medios Nutritivos |
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Miel de abeja – el mas usado |
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Ingrediente: |
Miel pura de abeja. Sin aditivos ni edulcorantes artificiales. |
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Concentracion: |
4% en peso: 4 g de miel por cada 100 ml de agua destilada (40 g por litro). |
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Ventaja: |
Simple, barata y muy efectiva. Azucares simples que el micelio asimila facilmente. El mas accesible de todos. |
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Limite: |
A concentraciones superiores al 6% favorece la contaminacion bacteriana. Respetar el 4% sin exceder. |
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Donde conseguir: |
Cualquier supermercado. Miel de flores sin procesar – 2-4 EUR. |
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Extracto de malta |
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Ingrediente: |
Extracto de malta en polvo – el mismo que se usa en el agar MEA. |
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Concentracion: |
1-2%: 10-20 g por litro de agua destilada. |
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Ventaja: |
Mas complejo nutricionalmente que la miel – azucares, aminoacidos y vitaminas B. El micelio crece mas denso y vigoroso. |
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Limite: |
Mas caro que la miel. El medio mas oscuro dificulta la lectura visual de contaminacion. |
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Donde conseguir: |
Amazon: extracto de malta en polvo laboratorio. 8-15 EUR/500g. |
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Karo / Sirope de maiz |
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Ingrediente: |
Sirope de maiz transparente (Karo light o equivalente). Sin colorantes. |
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Concentracion: |
4%: 40 ml por litro de agua destilada. |
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Ventaja: |
Glucosa pura y limpia. Medio completamente transparente – la mejor visibilidad para detectar contaminacion. |
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Limite: |
Menos nutritivo que la miel o el extracto de malta. Dificil de encontrar en Espana. |
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Donde conseguir: |
Amazon: Karo light corn syrup. |
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Resumen comparativo de medios |
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Medio |
Concentracion |
Velocidad micelio |
Visibilidad |
Dificultad |
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Miel |
4% |
Buena |
Alta – claro |
Minima – primera opcion |
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Extracto de malta |
1-2% |
Muy buena |
Media – algo turbio |
Baja |
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Melaza de cana |
2-3% |
Buena |
Muy baja – muy oscuro |
Media |
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Karo / sirope maiz |
4% |
Buena |
Maxima – completamente claro |
Baja |
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Agua de coco |
50-100% |
Variable |
Alta |
Media |
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PARTE 2 – Material Necesario |
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Material |
Especificacion |
Donde conseguirlo |
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Frasco de cristal 250-500 ml |
Con tapa perforada y filtro de polyfill o algodon en el agujero. |
Cualquier frasco de conserva limpio. |
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Agua destilada |
Sin cloro. La del supermercado para plancha de vapor vale perfectamente. |
Supermercado – 1 EUR el litro. |
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Ingrediente nutritivo |
Miel, extracto de malta, o el medio elegido. |
Segun el medio elegido. |
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Bola de acero inoxidable o canica |
De 10-15 mm de diametro. Va dentro del frasco. Al agitar rompe los fragmentos de micelio. |
Amazon: bola acero inoxidable 15mm. |
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Olla a presion |
Para esterilizar el medio. |
— |
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Jeringa 10-20 ml esteril con aguja |
Para inocular y extraer LC. |
Farmacia. |
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Alcohol isopropilico 70% y mechero |
Desinfeccion y flameado. |
Farmacia. |
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SAB |
Still Air Box – entorno esteril para trabajar. |
Caja de plastico grande con dos agujeros. |
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La bola de acero no es opcional – es la diferencia entre un LC denso y uniforme y uno con grumos compactos inutilizables. Agitar sin ella no rompe los agregados de micelio y el medio queda con zonas sin colonizar. |
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PARTE 3 – Preparacion del Medio Paso a Paso |
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Cantidades para frasco de 250 ml (referencia miel) |
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Ingrediente |
Cantidad |
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Agua destilada |
250 ml |
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Miel pura |
10 g (4%) |
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Bola de acero inoxidable |
1 unidad – dentro del frasco |
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1 |
Meter la bola de acero en el frasco Primero la bola – luego el liquido. Si la metes al final puedes salpicar el medio ya preparado. |
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2 |
Disolver el ingrediente nutritivo en agua destilada fria Anadir el agua primero, luego la miel u otro ingrediente. Agitar hasta disolucion completa y homogenea. |
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3 |
Preparar la tapa correctamente Perforar la tapa con un clavo o taladro – agujero de 5-8 mm. Rellenar el agujero con algodon o polyfill compactado. Cubrir con papel de aluminio ajustado. |
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4 |
Esterilizar 121 C / 15 PSI durante 20-25 minutos. El medio liquido esteriliza mas rapido que el grano porque el calor penetra mejor en liquido. |
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5 |
Enfriar completamente Minimo 8-12 horas. Inocular con el frasco caliente mata el inoculo en el acto. |
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6 |
Verificar el medio 3-5 dias antes de inocular Dejar a temperatura ambiente 3-5 dias. Cualquier contaminacion del proceso de preparacion sera visible. |
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PARTE 4 – Inoculacion, Incubacion y Lectura |
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Parametro |
P. cubensis |
P. cyanescens |
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Temperatura |
23-26 C |
28-30 C |
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Luz |
Oscuridad o luz tenue |
Oscuridad o luz tenue |
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Agitacion |
Una vez al dia, movimientos circulares suaves |
Idem |
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Tiempo hasta LC activo |
5-14 dias desde esporas * 3-7 dias desde LC |
Idem |
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Dias |
Lo que ves |
Interpretacion |
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1-2 |
Nada visible o turbidez muy ligera |
Normal – el micelio se esta estableciendo. |
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3-5 |
Primeros grumos blancos flotantes muy pequenos |
La germinacion arranco. Buen signo. |
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5-10 |
Grumos visibles y en aumento, liquido ligeramente turbio |
Colonizacion activa en curso. |
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10-14 |
Grumos abundantes, liquido turbio blanco al agitar |
LC activo – listo para usar o conservar. |
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Mas de 14 sin cambios |
Liquido transparente sin grumos |
LC no arranco o contaminacion temprana. |
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Como leer el LC a contraluz |
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Lo que ves |
Significa |
Accion |
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Grumos blancos que se dispersan y reagrupan, liquido blanco turbio |
LC activo y sano |
Usar o conservar |
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Liquido completamente transparente sin grumos |
LC sin colonizar o degradado |
Esperar mas dias o descartar |
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Verde, negro, rosa u otro color |
Contaminacion por moho |
Descartar – no abrir en interior |
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Amarillo intenso o marron con olor agrio |
Contaminacion bacteriana |
Descartar |
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PARTE 5 – Cantidad a Inocular por Frasco de Grano |
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Tamano del frasco |
LC recomendado |
Minimo viable |
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250 ml (frasco pequeno) |
2-3 ml |
1 ml |
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500 ml (frasco estandar) |
3-5 ml |
2 ml |
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1000 ml (frasco grande) |
5-8 ml |
3 ml |
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1500-2000 ml (frasco muy grande) |
8-12 ml |
5 ml |
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Errores Frecuentes |
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Agua del grifo sin desinfectar |
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El cloro inhibe el micelio. Aunque en pequenas cantidades no lo mata, ralentiza significativamente el crecimiento. |
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Concentracion de nutrientes demasiado alta |
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Por encima del 6% en miel o 3% en extracto de malta el medio favorece mas la bacteria que el micelio. |
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No meter la bola de acero |
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El micelio forma agregados compactos. El LC resultante tiene grumos inutilizables. |
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No verificar el medio 3-5 dias antes de inocular |
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Una contaminacion en el medio apareceria antes de inocularlo. Si se inocula sin verificar se pierde tiempo y material. |
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BLOQUE 2 Proceso de Cultivo
Esterilizacion * Ciclo completo * Tips y errores |
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06
ESTERILIZACION Y PASTEURIZACION Grano a 121C * CV a 80C * Metodo olla convencional |
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CAPITULO 06 ESTERILIZACION Y PASTEURIZACION
Grano a 121C / 15 PSI * CV a 80C * Metodo olla convencional
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D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos |
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PARTE 1 – Esterilizacion del Grano en Olla a Presion |
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Opciones de tapa |
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Opcion |
Descripcion |
Valoracion |
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A – Algodon |
4 agujeros de 5mm, algodon por dentro, aluminio por fuera |
Funciona, se empapa con el tiempo |
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B – Polyfill |
Trozo de relleno sintetico sellado con goma o silicona |
Mejor: no se compacta ni empapa |
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Tiempos de esterilizacion |
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Tamano del frasco |
Tiempo a 15 PSI |
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400-500 ml |
90 minutos |
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750-1000 ml |
2 horas |
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1500-2000 ml |
2 horas 30 minutos |
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Estos tiempos son desde que la olla ALCANZA los 15 PSI, no desde que la pones al fuego. |
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1 |
Fuego alto Hasta que salga vapor constante por la valvula. |
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2 |
Bajar a fuego medio-bajo Lo justo para mantener 15 PSI sin que suba mas. |
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3 |
Contar el tiempo Desde que el manometro marca 15 PSI. |
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4 |
Apagar y dejar enfriar sola No pongas bajo el grifo. No abras la valvula. El cambio brusco de presion puede aspirar contaminantes. |
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5 |
Esperar presion cero + 30 min Solo cuando el manometro marca 0 y han pasado 30 min mas, abres. |
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6 |
Enfriar 12-24 horas Sobre superficie limpia. No inocules hasta enfriamiento total. |
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Por que esperar 12-24 h antes de inocular? El frasco caliente mata el inoculo. La condensacion interna es maxima mientras enfria. Un frasco destapado en ese momento se contamina casi seguro. |
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PARTE 2 – Pasteurizacion del CV |
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La pasteurizacion a 80 C elimina mohos competidores (Trichoderma, Penicillium) pero preserva la microbiota bacteriana beneficiosa del sustrato. Si esterilizas a 121 C, tambien las eliminas y el CV queda mas vulnerable, no mas seguro. |
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1 |
Hidratacion del brick de coco Un brick de 650 g absorbe ~3-4 litros de agua. Usa agua HIRVIENDO – el calor inicial ya mata buena parte de los mohos superficiales. Vierte sobre el brick en un cubo grande. Deja reposar 30-60 minutos. |
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2 |
Mezcla con vermiculita 1:1 en volumen La vermiculita abre la estructura del sustrato mejorando la aireacion y actua como esponja de humedad. |
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3 |
Test de humedad Aprieta un punado con fuerza. Deben caer 2-3 gotas, no un chorro. Si chorrean mas: anadir vermiculita seca. Si no cae ninguna gota: anadir agua. |
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Metodos de pasteurizacion |
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Metodo |
Temperatura |
Tiempo |
Notas |
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Horno |
82 C |
90-120 min |
Mas controlable. Bolsa de horno o bandeja con aluminio sellado. |
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Bano maria |
80-85 C |
90 min |
Accesible. Termometro obligatorio. |
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Olla convencional |
80 C interior |
90 min |
El mas facil. Tapa con aluminio. El vapor pasteuriza uniforme. |
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Comparativa final: Grano vs CV |
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Grano |
CV |
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Proceso |
Esterilizacion (121 C / 15 PSI) |
Pasteurizacion (80 C) |
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Objetivo |
Eliminar TODO, incluidas endosporas |
Eliminar mohos, conservar bacterias beneficiosas |
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Herramienta |
Olla a presion (obligatoria) |
Horno, bano maria u olla convencional |
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Tiempo |
90 min – 2 h 30 min segun volumen |
90-120 minutos |
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Si fallas |
Contaminacion explosiva en colonizacion |
CV mas vulnerable pero recuperable |
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07
PSILOCYBE CUBENSIS GUIA COMPLETA Preparacion del grano * 8 fases * Del grano a los flushes |
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CAPITULO 07 PSILOCYBE CUBENSIS – GUIA COMPLETA DE CULTIVO
Preparacion del grano * 8 fases completas * Del grano a los flushes * Sustrato CV * Mezcla spawn:bulk detallada
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D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos |
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ANTES DE EMPEZAR – Preparacion del Grano |
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Grano |
Valoracion |
Para quien |
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Centeno |
El mejor. Duro, no se revienta facil, colonizacion rapida. |
Primera opcion siempre |
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Trigo |
Muy bueno, similar al centeno. |
Primera o segunda opcion |
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Mijo |
Excelente para principiantes – grano pequeno, mas puntos de inoculacion. |
Principiantes |
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Cebada |
Bueno pero algo mas blando – mas facil de pasarse en la coccion. |
Intermedio |
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Maiz |
Valido pero lento – grano grande, pocas superficies de contacto. |
No recomendado para empezar |
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1 |
Lavar el grano En colador o bol grande, anadir agua abundante y remover con la mano. Escurrir y repetir 3-4 veces hasta que el agua salga relativamente clara. |
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2 |
Remojar 12-24 horas Cubrir el grano con agua fria y dejar en remojo a temperatura ambiente. Pre-hidrata el interior del grano de forma gradual. |
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3 |
Cocer el grano Escurrir el agua de remojo. Cubrir con agua nueva. Llevar a ebullicion y mantener a fuego medio segun los tiempos de la tabla. |
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4 |
Test del grano correcto Cortar un grano por la mitad: el interior debe estar hidratado – blanco uniforme hasta el centro sin zona seca. Si hay punto duro: mas coccion. Presionar con los dedos: debe ceder con presion moderada sin deshacerse en papilla. |
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5 |
Escurrir y secar superficialmente Escurrir en colador. Extender en bandeja en CAPA FINA – no apilado. Reposar 30-60 minutos. El grano tiene que estar hidratado por dentro pero SECO AL TACTO por fuera. |
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6 |
Llenar los frascos Llenar hasta 2/3 de la capacidad – NUNCA hasta arriba. El tercio vacio permite agitar durante la colonizacion. |
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7 |
Tapar y esterilizar Tapa perforada con algodon o polyfill cubierto con papel de aluminio. Olla a presion: 121 C / 15 PSI / 90 MINUTOS. Presion baja sola. Esperar 10 min antes de abrir. |
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8 |
Enfriar completamente Minimo 12 horas, idealmente una noche entera. Si tienes dudas, espera mas. |
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Grano |
Sin remojo previo |
Con remojo 12-24 h |
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Centeno |
15-20 min |
10-12 min |
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Trigo |
15-20 min |
10-12 min |
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Mijo |
8-10 min |
5-7 min |
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Cebada |
20-25 min |
12-15 min |
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Maiz |
30-40 min |
20-25 min |
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Humedad superficial excesiva = contaminacion casi segura. El secado de 30-60 min no es opcional. |
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LAS 8 FASES DEL CULTIVO COMPLETO |
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FASE 1 — Inoculacion del grano |
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Del LC o jeringa de esporas al frasco de grano esterilizado |
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Verificacion |
Correcto |
Problema |
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Temperatura |
Frio al tacto – temperatura ambiente |
Si esta tibio: esperar mas |
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Aspecto del grano |
Seco, suelto, no apelmazado |
Si esta humedo: riesgo de contaminacion |
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Color |
Beige-dorado uniforme |
Si hay manchas de color: contaminado |
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1 |
Preparar el SAB Desinfectar con alcohol. Esperar 20-30 min de reposo. |
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2 |
Flamear la aguja Hasta rojo vivo. Enfriar tocando el cristal del frasco. |
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3 |
Inocular Insertar la aguja por el puerto de inyeccion o a traves del algodon. Distribuir el inoculo en varios puntos – no todo en el centro. 1-3 ml de LC o 1-2 ml de jeringa de esporas por frasco de 500 ml. |
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4 |
Sellar y etiquetar Cinta adhesiva sobre el orificio de inyeccion o micropore. Etiquetar: cepa, fecha de inoculacion. |
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FASE 2 — Colonizacion del grano |
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El micelio se establece y expande por todo el frasco |
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Parametro |
Valor |
Nota |
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Temperatura |
23-26 C |
Usar mat de calor con termostato – obligatorio |
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Luz |
Oscuridad o luz tenue |
La luz directa no beneficia en esta fase |
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Agitacion |
Cuando el micelio haya avanzado 30-40% |
Agitar rompe los grumos y acelera la colonizacion |
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Dias |
Lo que ves |
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1-3 |
Nada visible o primeros filamentos blancos en los puntos de inoculacion |
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3-7 |
Expansion visible desde los puntos – micelio blanco algodonoso o rizomorfoso |
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7-14 |
Colonizacion progresiva del frasco |
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14-21 |
Frasco completamente blanco y consolidado |
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No inocules el bulk hasta que el frasco este 100% blanco Y lleve 3-5 dias extra de consolidacion tras la colonizacion completa. |
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FASE 3 — Preparacion del Bulk CV |
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Fibra de coco + vermiculita pasteurizada |
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Componente |
Proporcion |
Funcion |
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Fibra de coco hidratada |
50% |
Base del sustrato – retencion de humedad |
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Vermiculita grado medio |
50% |
Drenaje y aireacion – evita encharcamiento |
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1 |
Hidratar la fibra de coco Un ladrillo de coco de 650g da aproximadamente 8 litros hidratado. Anadir agua caliente progresivamente hasta que toda la fibra este hidratada. |
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2 |
Mezclar con vermiculita Proporciones 1:1 en volumen. Mezclar bien hasta que sea homogeneo. |
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3 |
Test de humedad Test del puno: apretar fuerte un punado. Deben caer 2-3 gotas, nunca un chorro. |
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4 |
Pasteurizar a 80 C – NO esterilizar Horno, bano maria u olla convencional tapada. 80-82 C durante 90 minutos. NO usar olla a presion. Enfriar completamente – minimo 12 horas. |
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FASE 4 — Mezcla Spawn:Bulk |
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Distribuir los puntos de crecimiento por todo el volumen |
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Ratio |
Velocidad |
Riesgo contaminacion |
Uso recomendado |
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1:1 |
Muy rapida |
Bajo |
No necesario para cubensis |
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1:2 |
Rapida |
Bajo |
El mas recomendado para empezar |
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1:3 |
Normal |
Moderado |
Estandar una vez dominado |
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1:4+ |
Lenta |
Alto |
No recomendado |
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1 |
Desinfectar el contenedor Alcohol isopropilico en todas las superficies. Dejar evaporar completamente. |
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2 |
Agitar el frasco de spawn ANTES de abrir Agitar con fuerza 15-20 segundos. Rompe los fragmentos de micelio. El paso que mas gente salta. |
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3 |
Verter la mitad del bulk, luego el spawn, luego el resto del bulk Tres estratos: bulk – spawn – bulk. Facilita la mezcla uniforme. |
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4 |
Mezclar con las manos enguantadas Movimientos envolventes de abajo hacia arriba. |
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5 |
Nivelar y tapar Profundidad ideal: 5-8 cm. Tapar con film perforado o polyfill. Oscuridad a 23-26 C. |
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FASE 5 — Colonizacion del Bulk |
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El micelio se consolida en todo el volumen del sustrato |
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Dias |
Lo que ves |
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1-2 |
Nada visible. El micelio se esta estableciendo. |
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3-5 |
Primeros filamentos blancos alrededor de los granos de spawn. |
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5-8 |
Filamentos avanzando hacia el bulk, zonas blancas creciendo. |
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8-12 |
Superficie progresivamente blanca. |
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10-18 |
Colonizacion completa – superficie 100% blanca y densa. |
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FASE 6 — Casing Layer (opcional pero recomendado) |
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Capa de cobertura sobre el bulk colonizado. Mejora el pinning, mantiene la humedad superficial. |
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Opcion de casing |
Composicion |
pH aprox. |
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Turba + cal hidratada 10:1 (clasico) |
10 partes turba + 1 parte cal |
7.0-7.5 |
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Vermiculita humeda |
Vermiculita sola ligeramente humeda |
Variable |
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Fibra de coco + cal 10:1 |
10 partes coco + 1 parte cal |
6.5-7.0 |
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1 |
Preparar el casing Mezclar turba y cal en seco 10:1. Hidratar hasta que al apretar caiga 1-2 gotas maximo. pH objetivo 7.0-7.5. Pasteurizar a 80 C durante 60 min. Enfriar completamente. |
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2 |
Aplicar Capa uniforme de 1-1.5 cm sobre la superficie del bulk colonizado. Mas de 2 cm: los pins no llegan a la superficie. |
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3 |
Cambiar a condiciones de fructificacion Temperatura: bajar 3-4 C. HR: 90-95%. FAE activo: 3-4 ventilaciones al dia. Luz indirecta: 12 h luz / 12 h oscuridad. |
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FASE 7 — Fructificacion y Cosecha |
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Del primer pin a la cosecha. Cosechar con el velo tensandose o recien rasgado. Girar suavemente la base del tallo en sentido horario y tirar hacia arriba. No cortar – los munones quedan y se contaminan. |
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FASE 8 — Flushes Siguientes |
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Repetir el ciclo 2-4 veces con el mismo bloque |
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1 |
Retirar munones Con pinzas o bisturi desinfectado. Son tejido muerto y se contaminan rapidamente. Hacerlo siempre antes de rehidratar. |
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2 |
Cold shock Sumergir el bloque en agua fria (4-10 C) durante 12-24 horas. El descenso termico es el principal estimulo del segundo flush. |
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3 |
Escurrir y volver a condiciones de fructificacion Sacar el bloque, dejar escurrir 15-30 minutos y volver a la camara. |
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4 |
Repetir Un bloque sano produce 2-4 flushes. Los primeros suelen ser los mas abundantes. |
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Flush |
Rendimiento esperado |
Nota |
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1 |
El mas abundante |
70-80% del rendimiento total del bloque |
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2 |
Bueno |
20-25% del rendimiento total |
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3 |
Moderado |
El cold shock es critico aqui |
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4+ |
Escaso |
Valorar si compensa seguir |
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08
TIPS Y ERRORES FRECUENTES Referencia rapida * Lo que falla y como evitarlo |
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CAPITULO 08 TIPS Y ERRORES FRECUENTES
Referencia rapida * Lo que falla y como evitarlo
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D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos |
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Errores mas costosos |
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Inocular con el frasco caliente |
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Mata el inoculo en el acto. Resultado: frasco que no coloniza. Siempre enfriar minimo 12 horas. |
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Grano demasiado humedo al esterilizar |
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La humedad superficial es el caldo de cultivo para bacterias. El secado superficial de 30-60 min es obligatorio. |
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No agitar el frasco a los 5-7 dias |
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Colonizacion 30-50% mas lenta de lo posible. El agitado distribuye el micelio por el grano entero. |
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Saltarse el cold shock entre flushes |
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Reduce significativamente el segundo y tercer flush. |
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Casing demasiado grueso (+3 cm) |
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Los pins tardan mas y salen deformes. |
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Luz directa |
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No mata el cultivo pero altera la morfologia. Luz indirecta o fluorescente tenue. |
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Tips de oro poco mencionados |
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• Trabaja siempre de lo mas limpio a lo mas sucio – primero inoculas, luego preparas el bulk, nunca al reves. |
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• El olor es un detector excelente – micelio sano huele a tierra fresca. Agrio, amoniacal o fetido = contaminacion. |
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• Si dudas de un frasco, espera 24 h mas – los contaminantes se revelan solos. No contamines el bulk con un frasco dudoso. |
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• Polyfill es mejor que algodon – no se empapa, no se compacta, FAE mas consistente. |
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• Agua destilada o hervida fria para pulverizar – el cloro del grifo puede inhibir el micelio en superficie. |
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• El micelio rizomorfoso (cordones gruesos y definidos) es mas vigoroso que el algodonoso – prioriza clonar sectores rizomorfosos. |
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• Los contenedores de plastico oscuro reducen el estres por luz durante la colonizacion del bulk. |
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• Documenta cada ciclo: peso fresco, flushes, dias de colonizacion. Los datos propios son mas utiles que cualquier guia general. |
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BLOQUE 3 Problemas y Soluciones
Contaminacion * Troubleshooting de fructificacion |
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09
PROBLEMAS Y SOLUCIONES Contaminacion: guia visual * Protocolos * Troubleshooting |
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CAPITULO 09 PROBLEMAS Y SOLUCIONES
Contaminacion: guia visual * Protocolos por fase * Troubleshooting de fructificacion
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D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos |
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El objetivo no es cero contaminacion ni cero problemas. El objetivo es detectarlos pronto, actuar rapido y entender la causa para reducirlos en el siguiente ciclo. |
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PARTE 1 – Contaminacion: Guia Visual y Protocolos |
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Trichoderma spp. – El mas comun |
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Aspecto: |
Empieza como micelio blanco indistinguible. A los 3-5 dias vira a verde intenso, primero en parches, luego extendiendose. El verde es la esporulacion masiva. |
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Color: |
Verde brillante a verde oscuro. A veces verde-azulado. |
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Olor: |
A tierra humeda al principio, luego mas intenso y penetrante. |
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Origen: |
Sustrato insuficientemente pasteurizado, contaminacion cruzada, esporas en el ambiente. |
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Peligro: |
MEDIO – actuar en 24-48 h desde que aparece el verde. Se dispersa rapido. |
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Aspergillus spp. |
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Aspecto: |
Manchas negras, marrones oscuras o amarillo-verdosas. Puede ser polvo seco o manchas densas. |
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Color: |
Negro, marron oscuro, amarillo-verde segun la especie. |
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Olor: |
Mohoso, terroso, humedad cerrada. |
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Origen: |
Grano insuficientemente esterilizado, humedad excesiva, esterilizacion interrumpida. |
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Peligro: |
ALTO – algunas especies producen micotoxinas. NO abrir en interior cerrado. |
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Penicillium spp. |
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Aspecto: |
Similar a Trichoderma al inicio. Verde-azulado a azul-grisaceo. Textura mas polvorosa. |
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Color: |
Azul-verde, azul-gris. Mas azul que el verde puro de Trichoderma. |
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Olor: |
Mohoso, similar a pan viejo. |
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Origen: |
Los mismos que Trichoderma. Muy comun en sustratos de grano. |
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Peligro: |
MEDIO – actuar igual que con Trichoderma. |
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Contaminacion bacteriana |
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Aspecto: |
No produce colores llamativos. Senales: micelio amarillo, liquido viscoso en fondo del frasco, grano blando y apelmazado. |
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Color: |
Sin color propio. Micelio amarillento o normal con halos. |
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Olor: |
Agrio, amoniacal o fetido al acercar la nariz a la tapa sin abrir. |
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Origen: |
Tiempo de esterilizacion insuficiente, grano con exceso de humedad superficial. |
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Peligro: |
MEDIO – pero siempre descartar. Las bacterias no se contienen. |
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Neurospora – El pan rosado |
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Aspecto: |
Micelio rosa a naranja vivo, muy aereo y esponjoso. Crece extremadamente rapido – puede colonizar un frasco en 24-48 horas. |
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Color: |
Rosa, salmon, naranja brillante. Inconfundible. |
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Olor: |
Neutro o ligeramente dulzon. |
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Origen: |
Muy dificil de erradicar una vez presente. Las esporas se depositan en todas las superficies. |
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Peligro: |
MUY ALTO – dispersion masiva. Protocolo de emergencia inmediato. |
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Tabla de identificacion rapida |
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Color |
Textura |
Olor |
Agente |
Peligro |
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Verde brillante |
Algodonoso > polvoroso |
Penetrante |
Trichoderma |
Medio |
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Azul-verde, azul-gris |
Polvoroso |
Mohoso |
Penicillium |
Medio |
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Negro, marron oscuro |
Denso o polvoroso |
Mohoso cerrado |
Aspergillus |
ALTO – no abrir |
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Rosa, naranja vivo |
Esponjoso, muy aereo |
Neutro |
Neurospora |
MUY ALTO – emergencia |
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Sin color + olor |
Grano apelmazado |
Agrio, amoniacal |
Bacterias |
Siempre descartar |
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Contaminacion vs reaccion normal del micelio |
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Lo que ves |
Contaminacion? |
Explicacion |
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Micelio azulado al tocar |
NO |
Oxidacion de psilocina – normal y deseable. |
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Gotas amarillas aisladas sin olor |
No necesariamente |
Exudado metabolico normal. Vigilar si aumenta. |
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Olor a tierra fresca |
NO |
Micelio sano. |
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Olor a humedad cerrada sin color |
POSIBLEMENTE |
Inicio de bacteria. Revisar en 24 h. |
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Protocolos de actuacion por fase |
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Frasco de grano |
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• Contaminacion temprana (<50% colonizacion): descartar sin dudar. El grano esta perdido. |
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• Contaminacion tardia (>80% blanco): si es un parche pequeno de Trichoderma aislado y el micelio lo esta rodeando, espera 24-48 h. Si crece activamente: descartar. |
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• NUNCA usar un frasco con contaminacion para G2G ni para inocular bulk. |
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• Descarte seguro: bolsa zip cerrada sin abrir, fuera del espacio de cultivo. |
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Bulk CV durante colonizacion |
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• Verde localizado (<10% superficie): aislar fisicamente cortando con bisturi desinfectado. Cubrir con vermiculita seca. Si avanza en 48 h: descartar. |
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• Verde extendido (>20% superficie): descartar. Sin recuperacion posible. |
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• Contaminacion bacteriana (olor, grano apelmazado): descartar siempre. |
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PARTE 2 – Troubleshooting de Fructificacion |
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#1 |
No aparecen pins tras el casing |
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• CO2 acumulado – causa mas frecuente. Aumentar FAE a 4-5 ventilaciones al dia. |
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• Temperatura no bajo respecto a colonizacion – el descenso termico es trigger principal. Bajar 3-4 C. |
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• Casing demasiado seco – si la superficie se ve palida, pulverizar mas las paredes. |
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• Cold shock de rescate: nevera a 4-8 C durante 12-24 h si llevas 12+ dias sin pins. Funciona en el 70% de los casos. |
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#2 |
Pins que abortan antes de desarrollarse |
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• Bajada brusca de HR – causa mas comun. Ventilaciones mas cortas y pulverizar inmediatamente despues. |
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• Temperatura demasiado alta – por encima de 26 C en cubensis los pins tienden a abortar. |
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• Contaminacion bacteriana incipiente – si abortan con color amarillo-marron y hay olor, revisar bloque. |
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#3 |
Tallos muy largos y sombreros pequenos |
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• Exceso de CO2 casi siempre – el micelio crece hacia arriba buscando aire fresco. |
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• Solucion: aumentar FAE con mas ventilaciones o agujeros mas grandes en el contenedor. |
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#6 |
Overlay – superficie densa sin pins |
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• Causa: FAE insuficiente durante la colonizacion del bulk. El micelio crecio hacia arriba. |
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• Solucion 1: rascar suavemente la superficie con tenedor o bisturi esteril. |
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• Solucion 2: aplicar capa fina de casing fresco encima. |
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#7 |
Segundo flush muy pobre o inexistente |
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• Cold shock no realizado – es el principal estimulo del segundo flush. |
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• Rehidratacion insuficiente – el bloque debe sumergirse 12-24 horas, no 2-3 horas. |
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• Condiciones de fructificacion insuficientes – revisar temperatura, HR y FAE. |
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#8 |
Carpoforos con azulado intenso |
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• NO ES UN PROBLEMA – el azulado es oxidacion de psilocina. Senal de potencia. |
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• No afecta a la potencia ni a la seguridad. |
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BLOQUE 4 Tecnicas Intermedias
G2G * Preservacion del cultivo liquido |
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10
G2G: GRANO A GRANO Multiplicacion de spawn * Expansion exponencial * Limites por generacion |
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CAPITULO 10 G2G: GRANO A GRANO
Multiplicacion de spawn * Expansion exponencial * Limites por generacion
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D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos |
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Regla practica: maximo 4-5 generaciones antes de volver a inocular desde esporas, LC o clon fresco. La degeneracion genetica es silenciosa. |
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Material Necesario |
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Material |
Especificacion |
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Frasco de grano colonizado (fuente) |
100% blanco, sin ningun signo de contaminacion. Cualquier duda = no usar. |
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Frascos de grano esteril (destino) |
Preparados segun cap. 06. Completamente frios antes de usar. |
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Alcohol isopropilico 70% |
Desinfeccion de tapas y superficies de trabajo. |
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Guantes de nitrilo y mascarilla |
Obligatorio en todo el proceso. |
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SAB |
Entorno limpio sin corrientes de aire. |
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Proceso Paso a Paso |
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Preparacion |
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1 |
Verificar el frasco fuente 100% blanco, sin manchas de ningun color. Cualquier duda – no lo uses. Un frasco contaminado inoculando 10 frascos nuevos = 10 frascos contaminados. |
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2 |
Verificar frascos destino Grano esteril y completamente frio. Si aun estan tibios, espera. |
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3 |
Preparar el entorno SAB limpio. Alcohol en guantes y superficie. Deja reposar el aire del SAB 15-20 minutos antes de empezar. |
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La transferencia |
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4 |
Agitar el frasco fuente ANTES de abrir: agita con fuerza para romper y fragmentar el micelio colonizado. Los fragmentos pequenos son los puntos de inoculacion. |
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5 |
Desinfectar las tapas Alcohol en la tapa del frasco fuente y en la tapa del frasco destino. Deja secar. |
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6 |
Apertura controlada en SAB Abre el frasco fuente. Inmediatamente abre el frasco destino. Trabaja rapido. |
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7 |
Transferir el grano METODO A (recomendado) – Volcado directo: inclina el frasco fuente sobre el destino y vierte una parte del grano colonizado. METODO B – Cuchara esteril: mas preciso en cantidad pero mas tiempo expuesto. |
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8 |
Cerrar inmediatamente Los dos frascos sin demora. |
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9 |
Agitar el frasco destino Una vez cerrado, agita para distribuir los fragmentos de micelio uniformemente por todo el grano nuevo. |
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Tabla de generaciones – limites de G2G |
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Generacion |
Riesgo de degeneracion |
Recomendacion |
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G1 a G2 |
Muy bajo |
Siempre hacer |
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G2 a G3 |
Bajo |
Sin problema |
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G3 a G4 |
Moderado |
Aceptable |
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G4 a G5+ |
Elevado |
Volver a tejido o esporas |
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Cada transferencia G2G es una reproduccion vegetativa. El micelio se replica a si mismo con alta fidelidad, pero pequenos errores de replicacion y la acumulacion de senescencia celular hacen que con cada generacion el micelio sea ligeramente menos vigoroso. |
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11
PRESERVACION DEL CULTIVO LIQUIDO 5 tecnicas * Nevera * LC a LC * Agar inclinado * Criopreservacion con glicerol |
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CAPITULO 11 PRESERVACION DEL CULTIVO LIQUIDO
5 tecnicas * Nevera * LC a LC * Agar inclinado * Criopreservacion con glicerol
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D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos |
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TECNICA |
LC activo en nevera |
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Principio: |
El micelio activo entra en estado de latencia metabolica a 4 C. |
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Material: |
Frasco LC activo + tapas limpias + nevera. |
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Proceso clave: |
Cerrar bien el frasco. Guardar en nevera a 4 C en oscuridad. Agitar suavemente antes de usar. |
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Duracion: |
2-4 meses. |
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Ventaja: |
La mas simple. Sin preparacion extra. |
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Limite: |
El mas corto de todos. |
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TECNICA |
LC a LC – pasaje a fresco |
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Principio: |
Transfsieres LC activo a frasco nuevo de medio nutritivo. Equivalente exacto al G2G en liquido. |
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Material: |
Frasco LC activo + frasco nuevo con medio esterilizado + jeringa + alcohol + mechero + SAB. |
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Proceso clave: |
Flamear aguja. Aspirar 3-5 ml del LC fuente cogiendo fragmentos. Inyectar en frasco destino frio. Agitar. Incubar 5-10 dias. |
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Duracion: |
Indefinido en teoria. Maximo practico: 4-5 generaciones antes de volver a tejido. |
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Ventaja: |
No necesitas olla a presion para el medio liquido. |
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Limite: |
Senescencia acumulada con las generaciones. |
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TECNICA |
Agar inclinado en nevera |
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Principio: |
El micelio coloniza un tubo de agar inclinado (MEA o PDA) y se conserva en nevera. |
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Material: |
Tubos de vidrio con rosca 15-20 ml + MEA o PDA + olla a presion + bisturi + SAB + parafilm. |
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Proceso clave: |
Llenar tubos con MEA. Esterilizar 121C/20 min. Inclinar a 30-45 grados al sacar. Inocular con 2-3 gotas LC. Colonizar 5-10 dias. Sellar y nevera. |
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Duracion: |
6-12 meses a 4 C. |
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Ventaja: |
La forma mas estable de conservar micelio a medio plazo sin glicerol. |
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Limite: |
Requiere preparacion de tubos inclinados. Mas trabajo inicial. |
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TECNICA |
Criopreservacion con glicerol a -20 C |
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Principio: |
El glicerol penetra las celulas del micelio y desplaza el agua intracelular evitando que el hielo rompa las membranas al congelar. |
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Material: |
Glicerina pura 99% (farmacia) + agua destilada + frasquitos de cristal + olla a presion + jeringa esteril + SAB + congelador -20 C. |
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Proceso clave: |
Preparar solucion glicerol 15%. Esterilizar. Mezclar 1:1 con LC activo. Distribuir en unidades de 3-4 ml. Nevera 60 min. Congelador -20 C. |
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Duracion: |
6-18 meses a -20 C. |
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Ventaja: |
Criopreservacion real casera. Sin equipamiento de laboratorio. |
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Limite: |
Cada descongelacion consume una unidad completa – no se puede recongelar. |
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TECNICA |
LC a agar – la mejor combinacion |
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Principio: |
El LC proporciona inoculo activo y verificado. El agar permite seleccionar el mejor sector. |
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Material: |
LC activo + placas de agar MEA o PDA preparadas. |
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Proceso clave: |
Inocular placa desde LC. Incubar 5-7 dias. Identificar mejor sector. Transferir a nuevo LC o grano. |
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Duracion: |
— |
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Ventaja: |
Combina lo mejor del LC y el agar. Permite seleccion genetica antes de escalar. |
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Limite: |
Requiere trabajo en agar (cap. 12). |
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Tabla de generaciones LC a LC |
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Generacion |
Riesgo |
Recomendacion |
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LC1 a LC2 |
Muy bajo |
Siempre hacer |
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LC2 a LC3 |
Bajo |
Sin problema |
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LC3 a LC4 |
Moderado |
Aceptable |
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LC4 a LC5+ |
Elevado |
Volver a tejido o esporas |
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Proceso Detallado – Tecnica 4: Criopreservacion con Glicerol |
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1 |
Preparar la solucion de glicerol Glicerina farmaceutica pura 99% (sin aditivos). Mezclar en proporcion 1:4 con agua destilada – resultado: solucion al 20%. Esterilizar a 121C/20 min. Enfriar completamente. |
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2 |
Mezclar LC activo + solucion de glicerol En SAB: aspirar 3-4 ml del LC activo con grumos visibles. Mezclar con igual volumen de solucion de glicerol fria. |
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3 |
Distribuir en unidades Distribuir en frasquitos de cristal de 5-10 ml, 3-4 ml por unidad. Sellar y etiquetar. |
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4 |
Proceso de congelacion gradual Guardar en nevera (4 C) 30-60 minutos antes de pasar al congelador. |
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5 |
Congelar a -20 C Pasar al congelador. No descongelar y recongelar – cada unidad es de uso unico. |
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6 |
Descongelacion para usar Sacar la unidad del congelador. Dejar descongelar a temperatura ambiente sin acelerar. Inocular directamente o amplificar en nuevo LC. |
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BLOQUE 5 Tecnicas Avanzadas
Agar en placa * Clonacion * De agar a LC |
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12
AGAR, PLACAS PETRI Y CLONACION DE TEJIDO Tipos * WA * MEA * PDA * Vertido * Trabajo en placa * Clonacion |
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CAPITULO 12 AGAR, PLACAS PETRI Y CLONACION DE TEJIDO
Tipos de placas * WA * MEA * PDA * Vertido * Trabajo en placa * Clonacion de tejido
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D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos |
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El agar es donde ocurre la micologia avanzada. Ver el micelio en placa antes de comprometer grano o bulk transforma el cultivo de una apuesta a una decision informada. |
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PARTE 1 – Las Placas Petri: Tipos y Como Elegirlas |
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Tipo |
Material |
Esterilizable a 121C |
Reutilizable |
Para quien |
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Desechables estandar |
Poliestireno (PS) |
NO |
NO |
Principiantes y uso regular |
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Reutilizables |
Polipropileno (PP) |
Solo sin presion |
SI (limitado) |
Uso intermedio |
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Profesionales |
Vidrio borosilicato |
SI – autoclave completo |
SI – indefinidamente |
Uso intensivo |
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PARTE 2 – Los Medios de Agar |
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WA – Water Agar |
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Composicion: |
Solo agar en polvo + agua destilada. Sin nutrientes. |
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Concentracion: |
15-18 g de agar por litro de agua. |
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Uso: |
Aislamiento y limpieza de sectores. Germinacion inicial desde esporas. |
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Ventaja: |
Sin nutrientes: los contaminantes no tienen ventaja nutricional. |
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Limite: |
Crecimiento muy lento. No indicado para diagnostico de viabilidad rapido. |
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MEA – Malt Extract Agar |
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Composicion: |
Extracto de malta en polvo + agar bacteriologico + agua destilada. |
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Concentracion: |
20 g de extracto de malta + 15 g de agar por litro de agua. |
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Uso: |
El medio estandar para trabajo con psilocibios. Colonizacion rapida y vigorosa. |
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Ventaja: |
Equilibrio perfecto entre nutricion y visibilidad. El mas versatil. |
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Limite: |
Favorable para ciertos contaminantes tambien. |
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PDA – Potato Dextrose Agar |
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Composicion: |
Extracto de patata + dextrosa + agar bacteriologico + agua destilada. |
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Concentracion: |
200 g de patata + 20 g de dextrosa + 15 g de agar por litro. |
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Uso: |
Clonacion de tejido. Diagnostico de viabilidad rapido. El mas nutritivo de los tres. |
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Ventaja: |
Crecimiento maximo. Indica rapidamente si el micelio esta activo. |
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Limite: |
El mas favorable para contaminantes. No usar para aislamiento fino. |
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PARTE 3 – Preparacion y Vertido de Placas |
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1 |
Preparar el medio Pesar los ingredientes. Anadir el agar al agua fria. Calentar en un matraz agitando hasta que el agar se disuelva completamente. |
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2 |
Esterilizar el medio liquido 121 C / 15 PSI / 20 minutos. Dejar enfriar a 55-60 C antes de verter (cuando el matraz es manejable con la mano sin quemar). |
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3 |
Verter en SAB Abrir la placa lo minimo posible. Verter rapidamente. 12-15 ml para placa de 90 mm. |
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4 |
Solidificacion A temperatura ambiente en 15-20 minutos. No mover hasta que este completamente solido. Invertir las placas para que el agua caiga sobre la tapa, no sobre el agar. |
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5 |
Verificacion Guardar las placas invertidas a temperatura ambiente 3-5 dias. Cualquier contaminacion sera visible. Descartar las placas con crecimiento extrano. |
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6 |
Sellar las placas verificadas Parafilm 2-3 vueltas alrededor del borde. Guardar invertidas a 4 C. Duran 3-6 meses bien selladas. |
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PARTE 4 – Inoculacion de Placas |
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1 |
Flamear el asa Hasta rojo vivo, 4-5 segundos. Enfriar 10-15 seg tocando el borde del agar sin colonizar. |
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2 |
Rascar esporas del sello Cantidad minima – con lo que queda en la punta es suficiente. |
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3 |
Distribuir en la placa Abre la placa lo MINIMO posible – 1-2 cm. Deposita haciendo una linea en zigzag o en espiral. |
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4 |
Cerrar y sellar Inmediatamente. Etiquetar con especie, cepa y fecha. |
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PARTE 5 – Lectura de Placas |
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Ilumina la placa desde el lado con una linterna – la luz rasante revela la textura del micelio mucho mejor que la luz cenital. |
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Lo que ves |
Significado |
Accion |
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Crecimiento denso, regular, avanzando en todas las direcciones |
Micelio sano y vigoroso |
Candidato a transferir o clonar |
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Micelio rizomorfoso – cordones gruesos con ramificaciones |
Sector de alto rendimiento |
Candidato prioritario |
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Velocidad de avance superior al resto de la placa |
Genetica agresiva y competitiva |
Transferir a placa nueva y expandir |
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Crecimiento irregular con zonas casi vacias |
Sector degenerado o debilitado |
Evitar – no transferir |
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Cualquier color no blanco |
Contaminacion |
Descartar la placa |
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Agar licuandose u olor fetido al abrir |
Contaminacion bacteriana |
Descartar inmediatamente |
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PARTE 6 – Trabajo con Placas Inoculadas |
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1 |
Flamear correctamente el bisturi Hoja entera hasta rojo vivo, 4-5 segundos. Esperar 10-15 segundos. Tocar brevemente el agar sin colonizar del borde para verificar que no quema. |
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2 |
Corte limpio y decidido No serres ni arrastres. Un corte de arriba abajo. El trozo debe tener 0.5-1 cm2. |
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3 |
Transferir siempre desde el frente activo Los bordes mas avanzados del micelio. NUNCA desde el centro ya colonizado. |
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4 |
Depositar boca abajo La superficie colonizada en contacto directo con el agar nuevo. |
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5 |
Cerrar y sellar inmediatamente Parafilm 2-3 vueltas. Etiquetar con origen, fecha y numero de generacion. |
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PARTE 7 – Clonacion de Tejido |
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Clonar tejido es tomar un fragmento del interior carnoso de un carpoforo maduro y cultivarlo en agar. El micelio resultante es geneticamente identico al donante. |
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Criterio del donante |
Por que importa |
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Primer o segundo flush |
Mayor vigor genetico. Los tardios dan clones mas debiles. |
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Colonizacion rapida |
Si aparecio antes que los demas: genetica de alto rendimiento. |
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Azulado intenso al cortar |
Alto contenido en psilocibina/psilocina. |
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Sin signos externos de contaminacion |
Cualquier mancha descalifica el ejemplar. |
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1 |
No lavar el carpoforo con agua El agua introduce contaminantes. |
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2 |
Desinfectar el exterior Algodon con alcohol 70% por toda la superficie exterior. |
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3 |
Secar con papel absorbente esteril El alcohol residual puede inhibir el micelio en el agar. |
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4 |
Rajar longitudinalmente – en SAB Con bisturi flameado y enfriado. Corte limpio y rapido. |
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5 |
Extraer 3-5 mm del interior Nunca de la superficie exterior aunque este desinfectada. Punto optimo: la union entre el tallo y el sombrero. |
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6 |
Depositar en el centro del agar boca abajo Cara de corte en contacto con el agar. Presion suave para asegurar contacto. |
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7 |
Cerrar, sellar y etiquetar Parafilm 2-3 vueltas. Especie, cepa, fecha, flush, numero de bloque. |
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PARTE 8 – De Agar a LC |
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Ventaja |
Respecto a inocular desde esporas |
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Velocidad |
El micelio activo coloniza el LC en 3-7 dias vs 7-14 desde esporas. |
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Certeza |
Has visto crecer ese micelio. Sabes que es limpio y vigoroso. |
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Seleccion genetica |
Llevas exactamente el genotipo del sector que elegiste en placa. |
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Multiplicacion |
De una placa puedes inocular varios LC y de ahi varios frascos de grano. |
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1 |
Identificar el mejor sector en la placa Ilumina desde el lado con linterna. Busca el frente activo mas vigoroso. |
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2 |
Flamear el bisturi Hasta rojo vivo, 4-5 segundos. Enfriar tocando agar sin colonizar del borde. |
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3 |
Cortar 2-3 trozos de agar colonizado De 0.5-1 cm2 cada uno, del frente activo. Varios trozos distribuyen mejor el inoculo. |
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4 |
Abrir el frasco de LC lo minimo posible Introduce los trozos directamente en el LC. |
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5 |
Cerrar y agitar suavemente Sellar inmediatamente. Movimientos circulares suaves para distribuir los fragmentos. |
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6 |
Incubar 23-26 C para cubensis, 28-30 C para cyanescens. Agitacion manual una vez al dia. |
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Errores Frecuentes en Agar |
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Intentar esterilizar placas con agar ya solidificado |
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El agar vuelve a licuarse a 121 C, se derrama y solidifica con superficie irregular. El orden es siempre: esterilizar el agar liquido en el matraz, enfriar, verter en placas. |
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Agar alimentario en vez de bacteriologico |
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Diferente poder gelificante y pureza. El resultado es un agar blando o turbio. |
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Esterilizar mas de 30 minutos |
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El agar se degrada con esterilizaciones largas – se vuelve turbio y gel mas blando. |
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BLOQUE 6 Especies Avanzadas y Postcosecha
P. cyanescens * P. natalensis * P. azurescens * Secado |
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13
PANAEOLUS CYANESCENS (COPELANDIA) Guia completa * Sustrato de estiercol * Casing layer detallado |
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CAPITULO 13 PANAEOLUS CYANESCENS (COPELANDIA)
Guia completa * Sustrato de estiercol * Casing layer detallado
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D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos |
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Panaeolus cyanescens es un hongo corofilo tropical considerablemente mas exigente que P. cubensis. Su potencia es 2-3 veces mayor, pero requiere estiercol como sustrato obligatorio, temperaturas mas altas en colonizacion y humedad extrema y constante en fructificacion. No es una especie para principiantes. |
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Parametro |
P. cubensis |
P. cyanescens |
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Dificultad |
Principiante |
Intermedio-avanzado |
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Sustrato base |
CV (coco+vermiculita) |
Estiercol obligatorio |
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Temp. colonizacion |
23-26 C |
28-30 C |
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Temp. fructificacion |
18-23 C |
23-26 C |
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Humedad fructificacion |
90-95% |
95-98% (critico) |
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Sensibilidad contam. |
Media |
Alta |
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Vel. colonizacion grano |
14-21 dias |
21-28 dias |
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Potencia relativa |
Referencia (1x) |
2-3x mayor |
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Pinning |
Relativamente facil |
Caprichoso, exige precision |
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PARTE 1 – Preparacion del Sustrato de Estiercol |
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Opcion A |
Estiercol de caballo + coco + vermiculita |
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Componente: Estiercol de caballo pasteurizado |
60% – Fuente nutritiva principal. El mas equilibrado. |
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Componente: Fibra de coco hidratada |
30% – Retencion de humedad y estructura fisica del sustrato. |
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Componente: Vermiculita grado medio |
10% – Drenaje y aireacion. Evita encharcamiento. |
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Nota: |
La mas equilibrada. El estiercol de caballo tiene mejor aireacion natural y es mas facil de manejar. |
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Opcion B |
Estiercol de vaca + paja + vermiculita |
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Componente: Estiercol de vaca pasteurizado |
70% – Fuente nutritiva principal. Mas denso y nutritivo que el de caballo. |
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Componente: Paja de trigo picada fina |
20% – Estructura adicional y fuente de celulosa. |
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Componente: Vermiculita |
10% – Drenaje. |
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Nota: |
El estiercol de vaca es mas nutritivo pero mas denso y propenso al encharcamiento. |
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Opcion C |
Estiercol deshidratado de vivero + coco + vermiculita |
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Componente: Estiercol deshidratado |
50% – Fuente nutritiva. Ya curado – sin amoniaco. |
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Componente: Fibra de coco hidratada |
40% – Humedad y estructura. |
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Componente: Vermiculita |
10% – Drenaje. |
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Nota: |
La opcion mas accesible para quien no tiene acceso a estiercol fresco. |
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Preparacion del estiercol fresco – eliminacion del amoniaco |
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1 |
Extender en capa fina al aire libre 3-7 dias removiendo diariamente El amoniaco se volatiliza progresivamente. |
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2 |
Verificar ausencia de amoniaco Senal de listo: sin olor a amoniaco. Olor a tierra humeda. |
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3 |
Pasteurizar a 80 C / 60-90 min El mismo proceso que el CV. NO esterilizar. |
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4 |
Enfriar completamente – minimo 12 horas El sustrato caliente mata el micelio del spawn. |
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PARTE 2 – Inoculacion del Estiercol |
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Parametro |
Valor |
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Ratio spawn:sustrato |
1:2 maximo – no experimentar con ratios mas bajos de spawn |
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Temperatura de inoculacion |
Sustrato frio. Temperatura ambiente. |
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Donde inocular |
En SAB igual que con cubensis. |
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PARTE 3 – Colonizacion del Grano |
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Parametro |
Valor |
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Temperatura |
28-30 C (estricto) |
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Luz |
Oscuridad total |
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Riego |
Ninguno – no abrir |
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Tiempo estimado |
21-28 dias |
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La principal diferencia con cubensis: la temperatura de colonizacion del grano es critica. A 23 C el micelio de cyanescens avanza tan despacio que la contaminacion suele ganar. Necesitas 28-30 C de forma estable. |
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PARTE 4 – El Casing Layer – Obligatorio para Cyanescens |
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A diferencia de cubensis donde el casing es opcional, en cyanescens es obligatorio. Sin capa de cobertura el pinning es inconsistente o inexistente. |
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Mezcla |
pH aproximado |
Valoracion |
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Turba + cal hidratada 10:1 (ajustado) |
7.0-7.5 |
OPTIMA – la mas recomendada. |
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Fibra de coco + cal hidratada 10:1 |
6.5-7.0 |
Aceptable si no encuentras turba. |
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Vermiculita ligeramente humeda |
Variable |
Funciona pero menos efectiva para el pinning. |
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1 |
Pasteurizar el casing 80 C / 60 minutos. Enfriar completamente. |
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2 |
Aplicar sobre bloque 100% colonizado Capa uniforme de 1-1.5 cm. Mas de 2 cm hace que los pins no lleguen a la superficie. |
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3 |
Pulverizar las paredes No el casing directamente. Agua destilada o hervida fria. |
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4 |
Esperar pins 3-10 dias. Mantener HR al 95-98%. |
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PARTE 5 – Fructificacion |
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Parametro |
Colonizacion |
Fructificacion |
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Temperatura |
28-30 C |
23-26 C |
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Humedad rel. |
Sin regar |
95-98% (critico) |
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Luz |
Oscuridad |
Indirecta 12 h/dia |
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CO2 / FAE |
Acumulado |
3-4 ventilaciones/dia breves |
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Caracteristica |
Descripcion |
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Tallo |
Fino y largo, color crema a gris |
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Sombrero |
Pequeno (1-4 cm). Marron claro cuando humedo, palido al secar |
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Azulado |
Se azulean intensamente al manipular – senal de alta psilocibina/psilocina |
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Velo |
Muy fino, casi imperceptible. Se rompe rapido. |
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Flush |
Rendimiento relativo |
Nota |
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1. |
30-40% del total |
Puede ser escaso si las condiciones no fueron perfectas |
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2. |
35-45% |
Suele ser el mas abundante en esta especie |
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3. |
15-25% |
Productivo si se mantiene la HR |
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4.+ |
Residual |
Descartar bloque. Mayor riesgo de contaminacion |
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Errores Frecuentes con Cyanescens |
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✗ Temperatura demasiado baja en colonizacion – causa n.1 de fracaso. A 23 C el micelio avanza tan despacio que la contaminacion gana. |
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✗ HR insuficiente en fructificacion – los pins abortan masivamente. Sin sistema de control de humedad fiable, fracasaras consistentemente. |
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✗ Sustrato sin estiercol – el CV solo produce resultados pobres o nulos. No hay sustituto para el estiercol en esta especie. |
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✗ Casing demasiado grueso (+2 cm) – los pins no llegan a la superficie. |
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✗ Impaciencia con el grano – 28 dias de colonizacion es normal, no es senal de contaminacion ni de fallo. |
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14
PSILOCYBE NATALENSIS Natal Super Strength * Diferencias vs cubensis * Overlay * Natal snakes |
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CAPITULO 14 PSILOCYBE NATALENSIS GUIA COMPLETA DE CULTIVO
Natal Super Strength * Diferencias respecto a cubensis * Protocolo completo
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D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos |
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FICHA DE LA ESPECIE |
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Dato |
Informacion |
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Nombre cientifico |
Psilocybe natalensis Gartz, Reid, M.T. Sm. & Eicker (1995) |
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Nombre comun |
Natal Super Strength |
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Origen |
Provincia de KwaZulu-Natal, Sudafrica. Elevacion 1.500 m. |
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Habitat natural |
Pastizales abiertos y aridos sobre suelo fertilizado. Sin preferencia por estiercol directo. |
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Potencia |
Alta – estimado 2x P. cubensis. 0,6-1,81% alcaloides totales. |
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Sello de esporas |
Negro-violaceo – identico a cubensis |
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Azulado |
Muy intenso – mas pronunciado que cubensis |
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DIFERENCIAS RESPECTO A P. CUBENSIS |
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Parametro |
P. cubensis |
P. natalensis |
Impacto en cultivo |
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Temp. colonizacion |
23-26 C |
22-25 C |
Diferencia minima – misma manta de calor |
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Temp. fructificacion |
18-23 C |
18-22 C |
Ligeramente mas fria – no requiere cambios |
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Velocidad colonizacion |
Normal |
MAS RAPIDA – micelio muy agresivo |
Coloniza antes, menos tiempo de riesgo |
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Resistencia contaminacion |
Media |
ALTA – micelio dominante |
Mas tolerante a errores de tecnica |
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Pinning |
Variable |
Denso en racimos – clusters grandes |
Cosechas mas densas |
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Potencia |
Referencia base |
Aprox. 2x cubensis |
Ajustar dosis a la MITAD al inicio |
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Efecto corporal |
Moderado – nauseas frecuentes |
Limpio – menos carga corporal |
Preferida para microdosis |
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Sensibilidad CO2 |
Normal |
ALTA – muy sensible al CO2 acumulado |
FAE mas activo obligatorio |
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SUSTRATO OPTIMO |
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Componente |
Proporcion |
Funcion |
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Fibra de coco hidratada |
40% |
Base – retencion de humedad |
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Vermiculita grado medio |
20% |
Drenaje y aireacion |
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Estiercol de caballo pasteurizado |
40% |
Nutricion extra – mejora pinning y densidad |
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PROTOCOLO COMPLETO – FASE A FASE |
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FASE FASE 1 — Preparacion del grano |
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Identico a cubensis. Mismo proceso de lavado, remojo, coccion y esterilizacion. Mismos tiempos: 90 min a 121 C / 15 PSI. Diferencia: Sin cambios respecto a cubensis. |
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FASE FASE 2 — Inoculacion |
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Misma tecnica – LC o jeringa de esporas. LC recomendado sobre jeringa de esporas. Cantidad: 3-5 ml de LC por frasco de 500 ml. |
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FASE FASE 3 — Colonizacion del grano |
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Temperatura: 22-25 C. Micelio muy denso y rizomorfoso – coloniza rapidamente. El micelio de natalensis es notablemente mas grueso y rizomorfoso que cubensis. Tiempo: 10-18 dias. |
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FASE FASE 4 — Mezcla spawn:bulk |
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Igual que cubensis. Ratio 1:2 recomendado. El micelio de natalensis es tan agresivo que tolera ratios de 1:3 sin problema. |
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FASE FASE 5 — Colonizacion del bulk |
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Temperatura: 22-24 C. El micelio coloniza el bulk en 5-10 dias con buen spawn. Puede aparecer overlay – ver seccion especifica. |
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FASE FASE 6 — Casing (opcional pero recomendado) |
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Mismo casing que cubensis: turba+cal 10:1. Mejora el pinning especialmente con natalensis porque estimula la formacion de clusters densos. |
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FASE FASE 7 — Fructificacion |
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HR: 90-95%. Temperatura: 18-22 C. FAE: MAS ACTIVO que con cubensis – 3-4 ventilaciones al dia minimo. |
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EL OVERLAY EN NATALENSIS |
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Tipo de overlay |
Aspecto |
Que hacer |
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Overlay fino (bueno) |
Capa blanca densa pero con textura irregular, como piel de cocodrilo |
No actuar – los pins suelen romper esta capa. Es un buen overlay. |
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Overlay grueso (problematico) |
Capa muy densa, compacta y lisa – sin textura. No hay signos de actividad de pinning. |
Rascar con tenedor esteril + casing fresco encima + aumentar FAE. |
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LOS NATAL SNAKES |
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Aspecto |
Causa y solucion |
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Tallos muy largos y finos sin sombrero, doblados y serpenteantes |
CO2 acumulado – FAE insuficiente. Natalensis es mas sensible al CO2 que cubensis. Aumentar FAE inmediatamente a 5-6 ventilaciones al dia. |
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TABLA RESUMEN DE PARAMETROS |
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Parametro |
P. cubensis |
P. natalensis |
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Temp. colonizacion grano |
23-26 C |
22-25 C |
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Temp. colonizacion bulk |
23-26 C |
22-24 C |
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Temp. fructificacion |
18-23 C |
18-22 C |
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Humedad relativa fructificacion |
90-95% |
90-95% |
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FAE |
2-3 ventilaciones/dia |
3-4+ ventilaciones/dia |
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Overlay |
Ocasional |
Frecuente – vigilar |
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Natal snakes |
No aplica |
Posibles con FAE insuficiente |
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Potencia |
Referencia |
Aprox. 2x – ajustar dosis |
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Errores Frecuentes con Natalensis |
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✗ Usar la misma dosis que con cubensis – la natalensis es aproximadamente el doble de potente. La primera vez usar exactamente la mitad de la dosis habitual. |
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✗ FAE insuficiente – natal snakes. El CO2 acumulado produce tallos largos y finos sin sombrero. |
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✗ No gestionar el overlay – el overlay grueso y liso bloquea el pinning indefinidamente. |
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✗ Confundir el micelio grueso con contaminacion – los cordones densos y rizomorfosos de natalensis son su micelio sano. |
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15
PSILOCYBE AZURESCENS Flying Saucers * La mas potente * Cultivo exterior * Camas de madera |
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CAPITULO 15 PSILOCYBE AZURESCENS GUIA COMPLETA DE CULTIVO EXTERIOR
Flying Saucers * La mas potente documentada * Camas de madera * Proceso completo
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D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos |
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P. azurescens es un proceso COMPLETAMENTE DIFERENTE a cubensis y natalensis. No es un ajuste de parametros – es otra forma de cultivar. Sustrato de madera, cultivo exterior, temperaturas de frio otonal, meses de espera. Leer este capitulo completo antes de empezar. |
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FICHA DE LA ESPECIE |
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Dato |
Informacion |
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Nombre cientifico |
Psilocybe azurescens Stamets & Gartz (1995) |
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Nombres comunes |
Flying Saucers, Azure, Azzies |
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Descubierta |
1979 por Paul Stamets cerca de Astoria, Oregon (EEUU) |
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Origen |
Costa del Pacifico Noroeste de EEUU – habitat de dunas costeras |
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Potencia |
MUY ALTA – 1,0-2,4% alcaloides totales. La mas potente documentada. |
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Psilocibina |
Hasta 1,78% en peso seco – 3x la media de cubensis |
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Morfologia |
Sombrero convexo a plano, marron-caramelo a dorado. Borde ondulado caracteristico. Velo muy fino. |
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Habitat natural |
Arenas costeras con detritos de madera. Fructifica de septiembre a enero. |
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Azulado |
EXTREMADAMENTE intenso – el mas pronunciado del genero |
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DIFERENCIAS RADICALES RESPECTO A P. CUBENSIS |
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Parametro |
P. cubensis |
P. azurescens |
Impacto |
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Donde se cultiva |
Interior – frascos y camaras |
EXTERIOR – camas de madera |
Proceso completamente diferente |
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Sustrato |
Grano + CV o estiercol |
Astillas de madera de arbol duro |
Sin grano, sin CV |
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Temp. colonizacion |
23-26 C |
16-21 C |
Temperatura de otono-invierno |
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Temp. fructificacion |
18-23 C |
7-16 C – FRIO |
Necesita el frio real del otono |
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Tiempo total |
4-8 semanas |
4-8 MESES |
Proceso de temporada completa |
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Esterilizacion sustrato |
Obligatoria (121 C) |
NO – astillas sin tratar |
Solo humedecer las astillas |
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Potencia |
Referencia base |
Hasta 3x cubensis |
Ajustar dosis drasticamente |
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REQUISITOS DEL LUGAR |
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Requisito |
Descripcion |
Por que importa |
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Sombra parcial o total |
Nunca sol directo. Bajo arboles, junto a muros norte. |
El sol directo seca las astillas y degrada el micelio. |
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Temperatura otonal fria |
La zona debe alcanzar 7-16 C de forma natural en otono-invierno. |
El frio es el trigger de fructificacion. Sin frio: no hay hongos. |
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Proteccion del viento |
Junto a setos, muros o estructuras que reduzcan el viento. |
El viento seca las astillas rapidamente. |
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Acceso a agua |
Cerca de una toma de agua para regar en periodos secos. |
Las astillas deben mantenerse humedas pero no encharcadas. |
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Suelo permeable |
Evitar zonas de acumulacion de agua. |
El agua estancada es anaerobia y favorece contaminacion bacteriana. |
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PROCESO COMPLETO – PREPARACION DE LA CAMA |
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1 |
Preparar el grano spawn Identico al proceso de cubensis – lavar, cocer, secar, esterilizar 121 C / 15 PSI / 90 min. DIFERENCIA CLAVE: temperatura de colonizacion 16-21 C. Necesitas zona fresca, no el mat de calor. Tiempo de colonizacion: 3-5 semanas. |
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2 |
Inocular el grano con spawn de azurescens LC o jeringa de esporas de azurescens en SAB. TEMPERATURA DE COLONIZACION: 16-21 C. |
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3 |
Expansion en carton – paso intermedio Una vez el grano este 100% colonizado, romperlo en trozos pequenos y mezclarlo con carton humedecido en un contenedor. El micelio coloniza el carton en 1-2 semanas. |
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4 |
Preparacion de las astillas de madera Humedecer las astillas de madera abundantemente el dia antes de usarlas. NO esterilizar ni pasteurizar las astillas. La microbiota natural de la madera es parte del ecosistema que necesita azurescens. |
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5 |
Elegir y preparar el lugar Zona con sombra parcial o total. Retirar cualquier hierba o planta en la zona de la cama. |
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6 |
Primera capa – astillas humedas Extender una capa de 5-8 cm de astillas humedas sobre el suelo. Esta es la base de la cama. |
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7 |
Capa de spawn Distribuir el spawn colonizado sobre la capa de astillas. Ratio aproximado: 1 litro de spawn por metro cuadrado de cama. |
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8 |
Segunda capa de astillas Cubrir el spawn con otra capa de 5-8 cm de astillas humedas. Total: 12-18 cm de profundidad. |
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9 |
Cubrir para mantener la humedad Cubrir la cama con una capa fina de hojas secas o carton humedo para reducir la evaporacion. |
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SEGUIMIENTO Y FRUCTIFICACION |
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Periodo |
Lo que ocurre |
Tu intervencion |
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Semanas 1-4 tras instalar |
Micelio estableciendose – invisible desde fuera |
Mantener humedad. No tocar. |
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Mes 2 |
Filamentos blancos visibles bajo la superficie |
Mantener humedad. No remover. |
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Mes 3-4 |
Cama completamente colonizada |
Esperar la temporada de frio. |
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Primer frio otonal |
Los primeros carpoforos emergen |
Monitorear diariamente. Cosechar en el momento optimo. |
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Parametro |
Valor optimo |
Nota |
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Temperatura fructificacion |
7-16 C – optimo 10-15 C |
El frio es el trigger. Sin temperaturas por debajo de 16 C no fructifica. |
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Humedad del suelo |
Alta – astillas humedas constantemente |
Regar si hay periodo seco prolongado. |
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Temporada natural |
Septiembre-Enero en Europa |
Depende del clima local. |
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COSECHA Y POSTCOSECHA |
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10 |
Identificar el momento optimo Sombrero convexo a plano pero sin abrirse completamente. Velo tensandose pero aun intacto. ATENCION: el velo de azurescens es muy fino y se rasga antes que cubensis. |
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11 |
Tecnica de cosecha Girar ligeramente la base del tallo y tirar hacia arriba. No cortar – los munones pueden contaminar. |
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12 |
Secado urgente Secar inmediatamente tras la cosecha. Pre-secado 2-4 h con ventilador. Secado final con silica gel 24-48 h hasta test del cracker. |
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Errores Frecuentes con Azurescens |
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✗ Intentar cultivar en interior con las mismas condiciones que cubensis – azurescens necesita temperaturas de frio real (7-16 C) para fructificar. |
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✗ Esterilizar o pasteurizar las astillas – las astillas no se tratan termicamente. La microbiota natural de la madera es parte del ecosistema que necesita esta especie. |
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✗ Usar madera de coniferas – pino, abeto, cipres. Los terpenos de las coniferas inhiben el crecimiento del micelio. Usar exclusivamente madera de hoja caduca. |
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✗ Impaciencia – esperar resultados en semanas. El proceso de azurescens es de meses. |
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✗ No ajustar la dosis – azurescens puede ser hasta 3 veces mas potente que cubensis. Empezar con la tercera parte de la dosis habitual. |
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16
SECADO Y CONSERVACION DE LA COSECHA Pre-secado * Metodo A B C * Test del cracker * Largo plazo |
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CAPITULO 16 SECADO Y CONSERVACION DE LA COSECHA
Pre-secado * Metodo A B C * Test del cracker * Largo plazo
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D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos |
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El secado es el paso final y uno de los mas criticos. Las setas mal secadas pierden potencia, se contaminan con moho y son peligrosas para preparaciones como la miel azul. |
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Setas bien secas |
Setas con humedad residual |
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Duracion |
1-2 anos en conservacion adecuada |
Dias o semanas antes de contaminarse con moho |
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Psilocina |
Estable en oscuridad y frio |
Se degrada rapidamente – perdida de potencia |
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Miel azul |
Seguras – sin riesgo Clostridium |
Peligrosas – riesgo Clostridium botulinum |
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Dosificacion |
Facil de pesar con precision |
Peso variable – imposible dosificar con consistencia |
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PASO 1 – Pre-secado (Siempre Obligatorio) |
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El pre-secado elimina el 60-70% de la humedad superficial antes del secado final. Sin pre-secado el desecante (silica gel) se satura en horas sin completar el secado. |
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1 |
Limpiar las setas recien cosechadas Retirar con cuidado cualquier resto de sustrato del pie con un pincel seco o papel. No mojar nunca las setas para limpiarlas. |
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2 |
Cortar en laminas – opcional pero recomendado Cortar los sombreros y tallos en laminas de 0,5-1 cm. Aumenta la superficie de evaporacion y acelera significativamente el secado. |
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3 |
Extender en capa fina Sobre papel de cocina, rejilla metalica o bandeja de horno. En una sola capa – sin apilar ni superponer. |
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4 |
Aplicar corriente de aire suave Un ventilador pequeno apuntando cerca. NO usar calor directo – el calor degrada la psilocina por encima de 40-45 C. |
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5 |
Duracion del pre-secado 2-4 horas para setas en laminas. 4-8 horas para setas enteras pequenas. 8-12 horas para setas grandes enteras. Senal: la superficie ya no esta pegajosa al tacto. |
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PASO 2 – Secado Final (Elegir Metodo A, B o C) |
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METODO |
Silica gel en recipiente hermetico – el metodo estandar |
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Proceso: |
Colocar una capa de 3-5 cm de silica gel en el fondo de un tupper hermetico grande. Poner una rejilla o papel de cocina encima para que las setas no toquen la silica directamente. Extender las setas pre-secadas en una sola capa. Cerrar hermeticamente. Dejar 24-48 horas sin abrir. |
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Ventaja: |
Sin electricidad, sin ruido, sin supervision. La silica es regenerable – meter al horno a 120 C durante 2-3 horas cuando este saturada. El metodo mas seguro y consistente para uso domestico. |
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Limite: |
Mas lento que el deshidratador. Si no se hizo pre-secado la silica se satura antes de terminar el secado. |
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Tiempo: |
24-48 horas para setas bien pre-secadas. Hasta 72 horas para setas grandes. |
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METODO |
Silica gel con ventilador – metodo acelerado |
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Proceso: |
Igual que el metodo A pero con un pequeno ventilador USB dentro de una caja cerrada, circulando el aire continuamente sobre las setas y la silica. |
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Ventaja: |
Reduce el tiempo de secado a la mitad respecto al metodo A. Mismo nivel de seguridad. |
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Limite: |
Necesita ventilador USB y algo de ingenio para montar el sistema. |
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Tiempo: |
12-24 horas para setas bien pre-secadas. |
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METODO |
Deshidratador electrico – el metodo mas rapido |
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Proceso: |
Usar un deshidratador de alimentos con control de temperatura. Temperatura maxima: 45 C – NUNCA superar este valor. Extender las setas en las bandejas en una sola capa. |
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Ventaja: |
El metodo mas rapido disponible. Resultado muy uniforme. Ideal para cosechas grandes. |
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Limite: |
Necesita deshidratador – 30-80 EUR. Temperatura debe mantenerse por debajo de 45 C obligatoriamente. |
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Tiempo: |
4-8 horas a 40-45 C dependiendo del tamano y cantidad. |
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PASO 3 – El Test del Cracker – La Unica Confirmacion |
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El test del cracker es la unica forma de confirmar que el secado esta completo. No existe alternativa. Las setas que parecen secas pero no pasan el test tienen humedad residual que las hara deteriorarse en conservacion. |
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CORRECTO – listo para guardar |
MAS SECADO – devolver al desecante |
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Al doblar con los dedos cruje y se parte limpiamente en dos. Interior seco y palido. Sin flexibilidad ni elasticidad. |
Dobla sin crujir. Se siente ligeramente elastico o flexible. Devolver al recipiente con silica 12-24 horas mas. |
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CONSERVACION A LARGO PLAZO |
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Metodo |
Duracion |
Condiciones |
Notas |
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Bote de vidrio hermetico + nevera |
12-18 meses |
4 C, oscuridad total |
El mejor para uso regular. Anadir sobrecito de silica dentro del bote. |
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Bote de vidrio hermetico + temperatura ambiente |
6-12 meses |
Oscuridad, temperatura estable <20 C |
Funciona bien en invierno. En verano usar nevera. |
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Bote de vidrio + congelador |
2-3 anos |
-18 C, oscuridad |
Maxima duracion. Descongelar el bote cerrado antes de abrir. |
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Bolsa zip + camara de fotos seca |
6-12 meses |
Oscuridad, silica gel en la camara |
Opcion discreta. |
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FACTORES QUE DEGRADAN LA POTENCIA |
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Factor |
Efecto |
Como evitarlo |
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Luz UV y luz solar directa |
Degrada la psilocina rapidamente – perdida de potencia en semanas |
Vidrio ambar o verde oscuro. Oscuridad total. |
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Humedad |
Activa mohos y bacterias – perdida de potencia y contaminacion |
Silica gel dentro del bote. Test del cracker antes de guardar. |
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Calor sostenido (>25 C) |
Degrada los alcaloides progresivamente |
Nevera o lugar fresco estable. |
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Oxigeno |
Oxida la psilocina – azulado progresivo en conservacion |
Bote hermetico. Abrir el minimo imprescindible. |
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Errores Frecuentes en Secado |
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Saltarse el pre-secado |
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La silica gel se satura en horas con setas muy humedas y el secado queda incompleto. 2-4 horas de pre-secado con ventilador son siempre necesarias. |
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Usar el horno aunque sea al minimo |
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El horno domestico a minima temperatura suele estar a 60-80 C – muy por encima del limite de 45 C para la psilocina. Nunca usar el horno para secar setas. |
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No hacer el test del cracker |
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Las setas que se doblan en lugar de crujir tienen humedad residual. El test es obligatorio. |
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Guardar sin silica dentro del bote |
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Aunque las setas esten bien secadas al guardar, la apertura del bote introduce humedad ambiental cada vez. |
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GUIA DEFINITIVA DE CULTIVO DE HONGOS * D.F.F.G * Caracter informativo y educativo |
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