GUIA COMPLETA DEL GRANO A LA COSECHA Y EL SECADO

GUIA CULTIVO HONGOS

Psilocybe cubensis & Panaeolus cyanescens

16 capitulos * 7 bloques * Orden logico de aprendizaje

 

 

 

BLOQUE 0

BLOQUE 1

BLOQUE 2

BLOQUE 3

BLOQUE 4

BLOQUE 5

BLOQUE 6

 

Antes de empezar

Propagacion

Proceso cultivo

Problemas

Tec. intermedias

Tec. avanzadas

Especies

 

01 Glosario

02 Setup

03 Cepas

04 Sello->Jeringa

05 LC

06 Esterilizacion

07 P.cubensis

08 Tips

09 Problemas

10 G2G

11 Preservacion LC

12 Agar+Clonacion

13 Cyanescens

14 Natalensis

15 Azurescens

16 Secado

 

 

 

D.F.F.G * Guia de caracter informativo y educativo sobre micologia

 

 

 

BLOQUE 0

Antes de Empezar

 

Glosario * Setup * Eleccion de cepa

 

 

 

01

 

GLOSARIO DE TERMINOS

Todos los terminos tecnicos ordenados alfabeticamente

 

 

 

CAPITULO 01

GLOSARIO DE TERMINOS

 

 

Todos los terminos tecnicos de la guia ordenados alfabeticamente

 

 

D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos

 

 

 

C

 

 

 

CV

Coco + Vermiculita. Sustrato base compuesto por fibra de coco hidratada y vermiculita, principal sustrato bulk para P. cubensis.

 

 

 

D

 

 

 

Dextrosa

Monosacarido (azucar simple) usado como fuente de carbono en medios de cultivo como el PDA.

 

 

 

E

 

 

 

Endospora

Estructura de resistencia producida por ciertas bacterias (Bacillus spp.) que soporta hasta 100 C durante horas. Solo se destruyen a 121 C a presion.

 

 

 

Espora

Unidad reproductiva del hongo. Contiene el material genetico para iniciar un nuevo micelio. En hongos psilocibios son de color negro-violaceo.

 

 

 

Esporulacion

Proceso de produccion y liberacion masiva de esporas por parte de los carpoforos maduros.

 

 

 

Esterilizacion

Eliminacion total de todos los microorganismos viables incluyendo endosporas. Requiere 121 C a 15 PSI en olla a presion.

 

 

 

Extracto de malta

Producto derivado de la cebada malteada, rico en azucares y aminoacidos. Usado como fuente nutritiva en medios de agar (MEA).

 

 

 

F

 

 

 

FAE (Fresh Air Exchange)

Intercambio de aire fresco. Proceso de renovar el aire del contenedor para reducir el CO2 acumulado y aportar oxigeno fresco.

 

 

 

Flush

Tanda de cosecha. Oleada de carpoforos producida por el bloque colonizado. Un bloque produce 2-4 flushes antes de agotarse.

 

 

 

Flujo laminar

Dispositivo que filtra el aire mediante filtros HEPA creando una corriente de aire esteril. Alternativa profesional al SAB.

 

 

 

Frente activo

Zona del borde exterior del micelio donde las hifas mas jovenes y vigorosas estan expandiendose. Zona ideal para transferencias.

 

 

 

Fruiting trigger

Conjunto de cambios ambientales que senalizan al micelio que es momento de fructificar.

 

 

 

G

 

 

 

G1, G2, G3…

Generaciones sucesivas en el proceso G2G. G1 es el primer grano inoculado desde esporas o LC, G2 es grano inoculado desde G1, etc.

 

 

 

G2G (Grain to Grain)

Tecnica de transferencia de micelio de un frasco de grano colonizado a frascos nuevos de grano esteril para multiplicar el spawn.

 

 

 

Genotipo

Composicion genetica completa de un organismo. Cada espora tiene un genotipo unico; el tejido clonado mantiene el genotipo exacto del donante.

 

 

 

Grano maestro (Master jar)

Frasco G1 reservado como fuente para producir G2, manteniendo siempre una reserva de la genetica original.

 

 

 

H

 

 

 

Hifa

Filamento microscopico tubular que es la unidad basica estructural del micelio. El conjunto de hifas forma la red miceliar visible.

 

 

 

Higrometro

Instrumento para medir la humedad relativa del aire. Imprescindible para monitorear las condiciones de la camara de fructificacion.

 

 

 

HR (Humedad Relativa)

Porcentaje de vapor de agua presente en el aire respecto al maximo posible a esa temperatura. Expresada en %.

 

 

 

I

 

 

 

Inoculo

Material vivo (esporas, LC, micelio en grano o agar) usado para iniciar un cultivo nuevo.

 

 

 

L

 

 

 

Laminillas

Estructura laminar en la parte inferior del sombrero donde se producen y almacenan las esporas. Su patron forma el sello de esporas.

 

 

 

LC

Ver Cultivo liquido.

 

 

 

M

 

 

 

MEA (Malt Extract Agar)

Medio de cultivo en agar preparado con extracto de malta. El mas usado para trabajo con hongos psilocibios.

 

 

 

Micelio

Red de hifas que constituye el cuerpo vegetativo del hongo. La parte blanca y algodonosa que coloniza el sustrato.

 

 

 

Micelio rizomorfoso

Micelio con morfologia de cordones gruesos y definidos. Generalmente indica crecimiento vigoroso y genetica activa.

 

 

 

Micotoxina

Toxina producida por ciertos hongos (principalmente Aspergillus spp.) danina si se inhala o ingiere.

 

 

 

Moho

Termino coloquial para hongos filamentosos contaminantes como Trichoderma, Penicillium y Aspergillus.

 

 

 

Monotub

Contenedor de plastico con tapa que funciona como contenedor de bulk y camara de fructificacion simultaneamente.

 

 

 

Multispore

Inoculacion iniciada a partir de esporas sin aislar, resultando en multiples genotipos distintos.

 

 

 

O

 

 

 

Overlay

Capa densa de micelio aereo en la superficie del bulk cuando el FAE es insuficiente, impidiendo la formacion de pins.

 

 

 

P

 

 

 

Parafilm

Pelicula de cera flexible usada para sellar bordes de placas Petri. Semipermeable al oxigeno pero barrera para contaminantes.

 

 

 

Pasteurizacion

Tratamiento termico a 80-82 C que elimina la mayoria de patogenos y mohos pero preserva las endosporas bacterianas beneficiosas.

 

 

 

PDA (Potato Dextrose Agar)

Medio de cultivo en agar preparado con extracto de patata y dextrosa. El mas nutritivo, usado para clonacion de tejido.

 

 

 

Perlita

Material volcanico expandido con alta porosidad. Absorbe agua y la libera lentamente, usado como reservorio pasivo de humedad.

 

 

 

PF Tek

Tecnica de cultivo en pasteles de harina de arroz integral y vermiculita, desarrollada por Robert McPherson.

 

 

 

pH

Escala que mide la acidez o alcalinidad. Rango 0-14, neutro en 7. El casing optimo para P. cubensis es pH 7-7.5.

 

 

 

Pin / Primordio

Fase inicial del carpoforo. Pequeno punto blanco que emerge del sustrato y se desarrollara en cuerpo fructifero maduro.

 

 

 

Pinning

Proceso de formacion de primordios. El momento en que aparecen los primeros pins en la superficie del bloque.

 

 

 

Placa Petri

Recipiente circular de plastico o vidrio de boca ancha y baja altura, usado para preparar y trabajar con medios de agar.

 

 

 

Polyfill

Material sintetico de relleno que actua como filtro de aire transpirable. Alternativa al algodon para tapas de frascos y agujeros de FAE.

 

 

 

PSI (Pounds per Square Inch)

Unidad de presion. 15 PSI es la presion de trabajo de una olla a presion domestica, suficiente para alcanzar 121 C.

 

 

 

Psilocibina

Principal alcaloide psicoactivo de los generos Psilocybe y Panaeolus. Prodroga que se convierte en psilocina en el organismo.

 

 

 

Psilocina

Metabolito activo de la psilocibina. Menos estable quimicamente, se oxida con facilidad (reaccion de azulado).

 

 

 

R

 

 

 

Ratio

Proporcion entre dos cantidades. En cultivo expresa la relacion spawn:bulk (ej. 1:3 = una parte de spawn por tres de bulk).

 

 

 

Reproduccion vegetativa

Reproduccion sin intervencion sexual, produciendo organismos geneticamente identicos al progenitor.

 

 

 

S

 

 

 

SAB (Still Air Box)

Caja de plastico con agujeros para los brazos que crea un volumen de aire quieto para trabajar con bajo riesgo de contaminacion.

 

 

 

Sello de esporas

Deposicion natural de esporas sobre papel de aluminio creando el patron radial de las laminillas. Metodo de conservacion genetica.

 

 

 

Senescencia

Proceso de envejecimiento del micelio con las generaciones sucesivas, manifestado como reduccion progresiva del vigor.

 

 

 

SGFC (Shotgun Fruiting Chamber)

Camara de fructificacion casera con caja de plastico perforada con agujeros de 6mm y perlita humeda en el fondo.

 

 

 

Silica gel

Agente desecante (dioxido de silicio poroso) que absorbe la humedad. Usado para secar hongos y mantenerlos secos en conservacion.

 

 

 

Spawn

Material de siembra. El grano colonizado con micelio usado para inocular el sustrato bulk.

 

 

 

Sustrato

Material nutritivo sobre el cual crece el micelio. Puede ser grano, CV, estiercol, paja o agar.

 

 

 

T

 

 

 

Termostato

Dispositivo que regula automaticamente la temperatura activando o desactivando la fuente de calor segun la sonda.

 

 

 

Turba de musgo (Sphagnum)

Material organico derivado de musgo parcialmente descompuesto. Usado en mezclas de casing por su retencion de humedad.

 

 

 

V

 

 

 

Velo parcial

Membrana fina que conecta el borde del sombrero con el tallo en hongos jovenes. Su rotura indica madurez y momento optimo de cosecha.

 

 

 

Vermiculita

Mineral de silicato expandido por calor con estructura laminar que retiene humedad. Usado en sustratos CV y como casing.

 

 

 

W

 

 

 

WA (Water Agar)

Agar sin nutrientes preparado solo con agua destilada y agar en polvo. Usado para germinacion inicial y aislamiento.

 

 

 

 

 

02

 

SETUP COMPLETO DE CULTIVO

SAB * Camara de fructificacion * Temperatura * Humedad * FAE

 

 

 

CAPITULO 02

SETUP COMPLETO DE CULTIVO

 

 

SAB * Camara de fructificacion * Temperatura * Humedad * FAE * Luz

 

 

D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos

 

 

 

PARTE 1 – El SAB (Still Air Box)

 

 

 

El SAB es el entorno de trabajo mas accesible y efectivo para el cultivador domestico. Funciona por un principio fisico simple: en un volumen de aire completamente quieto, las particulas pesadas (esporas de contaminantes) se depositan en el fondo en lugar de flotar y llegar al material esteril.

 

 

 

1

Desinfectar el interior

Alcohol isopropilico en toda la superficie interior. Dejar secar.

 

 

 

2

Introducir todo el material

Frascos, jeringas, placas – todo dentro antes de empezar.

 

 

 

3

Esperar 20-30 minutos

Sin tocar. El aire interior debe calmarse completamente. Este es el paso mas ignorado y el mas importante del SAB.

 

 

 

4

Trabajar con movimientos lentos

Introduce los brazos despacio. Sin movimientos bruscos que generen corrientes dentro del SAB.

 

 

 

PARTE 2 – Control de Temperatura

 

 

 

Especie

Colonizacion

Fructificacion

 

P. cubensis

23-26 C

18-23 C

 

P. cyanescens

28-30 C

23-26 C

 

 

 

Opciones para mantener temperatura de colonizacion

 

Metodo

Como funciona

Coste

Nota critica

 

Mat de calor para reptiles

Coloca los frascos encima. Calienta desde abajo.

10-20 EUR

OBLIGATORIO usar termostato – sin el alcanza 35-40 C.

 

Camara de polispan con bombilla

Caja de corcho blanco con bombilla de bajo consumo dentro.

5-10 EUR

Pon termometro dentro para verificar temperatura.

 

Habitacion calida

Si la casa esta a 23-25 C de forma estable.

Cero

Solo valido para P. cubensis. No para P. cyanescens.

 

 

 

Mat de calor sin termostato: temperatura incontrolada que oscila entre 28-40 C. El micelio muere por calor. El termostato es obligatorio.

 

 

 

PARTE 3 – La Camara de Fructificacion

 

 

 

La camara de fructificacion necesita mantener simultaneamente alta humedad y buen intercambio de aire.

 

 

 

Opcion A

Shotgun Fruiting Chamber (SGFC)

 

Material:

Caja plastico transparente grande (min 60x40x40 cm) + taladro broca 6mm + perlita.

 

Construccion:

Perfora la caja con agujeros de 6mm en cuadricula de 5×5 cm en paredes, fondo y tapa. Pon 5-7 cm de perlita humeda en el fondo. Coloca contenedores encima. Humedece perlita y paredes 1-2 veces al dia.

 

Ventajas:

La mas popular para casero. Simple, sin electricidad adicional. FAE pasivo garantizado por los agujeros. Barata.

 

Limites:

Dificil controlar HR con precision. Requiere pulverizacion manual diaria.

 

 

 

Opcion B

Martha Tent

 

Material:

Mini invernadero de tela (60-100 EUR) + humidificador ultrasonico frio + temporizador de enchufe + ventilador USB + higrometro.

 

Construccion:

Humidificador nebuliza segun temporizador (15 seg cada 3-4 min). Ventilador en parte superior extrae CO2. Higrometro controla que la HR se mantenga en rango.

 

Ventajas:

Control preciso de HR. Escalable para varios bloques. Minima intervencion manual con temporizador.

 

Limites:

Mayor coste inicial. Humidificador necesita agua destilada obligatoria (el agua dura calcifica el difusor).

 

 

 

Opcion C

Monotub

 

Material:

Caja plastico opaca grande con tapa (60L o mas) + polyfill.

 

Construccion:

Perfora 6-8 agujeros de 5 cm en los laterales a media altura. Rellena con polyfill. El bulk colonizado fructifica directamente dentro.

 

Ventajas:

Sistema todo-en-uno. Minima manipulacion. Excelente para principiantes con P. cubensis.

 

Limites:

Menos control sobre HR. No apto para P. cyanescens que necesita HR del 95-98%.

 

 

 

PARTE 4 – Control de Humedad

 

 

 

Fase

P. cubensis

P. cyanescens

 

Colonizacion bulk

No relevante (tapa cerrada)

No relevante

 

Fructificacion

90-95%

95-98% (critico)

 

 

 

Un higrometro digital es imprescindible – coste 5-15 EUR. Los analogicos tienen errores de +/-10-15%.

 

 

 

Tecnica

HR conseguida

Coste

Esfuerzo

 

Perlita humeda en SGFC

85-92%

Muy bajo

Rellenar cada 2-3 dias

 

Pulverizacion manual de paredes

+5-8% sobre base

Cero

2 veces al dia

 

Humidificador ultrasonico

90-98% controlado

Medio

Minimo con temporizador

 

Tapa casi cerrada (monotub)

92-96%

Cero

Sin intervencion

 

 

 

PARTE 5 – Control de CO2 y FAE

 

 

 

El micelio produce CO2 al respirar. En concentraciones altas inhibe la formacion de pins y produce tallos largos y caps pequenos.

 

 

 

Tipo de FAE

Como funciona

Suficiente para

 

FAE pasivo

Agujeros con polyfill o perlita – intercambio continuo sin intervencion.

P. cubensis en monotub o SGFC.

 

FAE activo manual

Abrir 2-4 veces al dia durante 30-60 segundos.

P. cyanescens y setups sin agujeros.

 

FAE activo con ventilador

Ventilador programado con temporizador extrae CO2 continuamente.

Martha tent. Control preciso.

 

 

 

El equilibrio HR-FAE: ventilar baja la HR. Solucion: FAE breve y frecuente en lugar de largo y espaciado, y pulverizar inmediatamente despues de cada ventilacion.

 

 

 

PARTE 6 – Luz

 

 

 

Fase

Necesidad

Fuente valida

 

Colonizacion grano y bulk

Ninguna – oscuridad total

Cualquier lugar oscuro

 

Fructificacion

Luz indirecta 12 h/dia

Lampara de escritorio, luz ambiente, luz natural filtrada

 

 

 

Luz directa de sol: seca el ambiente y sube la temperatura. Oscuridad total en fructificacion: no mata el cultivo pero reduce y desorienta los pins.

 

 

 

Resumen del Setup Minimo Funcional

 

 

 

ZONA ESTERIL

 

SAB casero (caja plastico + 2 agujeros) + alcohol isopropilico + mechero

Suficiente para todo el trabajo esteril

 

 

 

COLONIZACION

 

Mat de calor de reptilario + termostato de enchufe con sonda

Control de temperatura 23-30 C segun especie

 

 

 

FRUCTIFICACION BASE

 

SGFC (caja con agujeros + perlita) + higrometro digital + pulverizador

Setup funcional para produccion continua de P. cubensis

 

 

 

UPGRADE OPCIONAL

 

Mini tent + humidificador ultrasonico + temporizador

Control automatizado de HR sin intervencion diaria. Necesario para P. cyanescens

 

 

 

Errores Frecuentes de Setup

 

 

 

SAB sin esperar el tiempo de reposo

 

Trabajar con el aire aun en movimiento anula el beneficio del SAB. Los 20-30 minutos de reposo son el paso mas importante.

 

 

 

Mat de calor sin termostato

 

Sin control la temperatura oscila entre 28 y 40 C. El micelio muere por encima de 35 C. El termostato es obligatorio, no opcional.

 

 

 

Humidificador de calor en lugar de frio

 

El humidificador de calor levanta la temperatura de la camara. Solo usar ultrasonico.

 

 

 

No medir la HR

 

Sin higrometro es imposible saber si la HR esta en el rango correcto.

 

 

 

Ventilacion excesiva

 

Ventilar demasiado o con corrientes directas seca el ambiente. FAE breve y frecuente, no prolongado.

 

 

 

 

 

03

 

CEPAS DE PSILOCYBE CUBENSIS

GT * B+ * PE * Albino A+ * Transkei * Ecuadorian * Mazatapec

 

 

 

CAPITULO 03

CEPAS DE PSILOCYBE CUBENSIS

 

 

GT * B+ * PE * Albino A+ * Transkei * Ecuadorian * Mazatapec * Comparativa

 

 

D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos

 

 

 

Golden Teacher (GT)

La referencia * Primera cepa recomendada

 

Velocidad colonizacion

Rapida

 

Rendimiento

Alto

 

Tamano carpoforos

Grande a muy grande

 

Facilidad de cultivo

MUY ALTA – coloniza bien en amplia gama de condiciones

 

Velocidad de pinning

Media-rapida

 

Potencia relativa

Media

 

Morfologia

Sombrero dorado a marron claro. Tallos largos y gruesos. Carpoforos de gran tamano de forma consistente.

 

Para quien:

Primera cepa para cualquier cultivador. Ideal para aprender el proceso completo.

 

 

 

B+ (B Plus)

La mas grande * Segunda cepa recomendada tras GT

 

Velocidad colonizacion

Rapida

 

Rendimiento

Alto

 

Tamano carpoforos

Grande a muy grande

 

Facilidad de cultivo

MUY ALTA

 

Velocidad de pinning

Media-rapida

 

Potencia relativa

Media

 

Morfologia

Sombrero marron claro a dorado. Tallos largos y gruesos. Carpoforos de gran tamano de forma consistente.

 

Para quien:

Segunda cepa recomendada tras GT. Ideal para maximizar rendimiento.

 

 

 

Transkei (TAT)

La mas rapida * Ciclos cortos y pinning denso

 

Velocidad colonizacion

MUY RAPIDA

 

Rendimiento

Medio-alto

 

Tamano carpoforos

Pequeno-medio pero en densidades muy altas

 

Facilidad de cultivo

Alta

 

Velocidad de pinning

MUY RAPIDA – racimos densos

 

Potencia relativa

Media-alta

 

Morfologia

Carpoforos mas pequenos que GT producidos en densidades muy altas. Sombrero naranja-marron con umbo central.

 

Para quien:

Cultivadores que quieren ciclos rapidos y cosechas frecuentes.

 

 

 

Albino A+ (AA+)

Variante albina * Pinning denso y estetica diferenciada

 

Velocidad colonizacion

Media-rapida

 

Rendimiento

Medio

 

Tamano carpoforos

Medio – sombreros mas pequenos que GT

 

Facilidad de cultivo

Media

 

Velocidad de pinning

Rapida – pinning muy denso

 

Potencia relativa

Media-alta

 

Morfologia

Carpoforos blancos o crema sin pigmentacion marron. Azulado muy pronunciado al manipularlos.

 

Para quien:

Cultivadores con experiencia basica que quieren variedad visual.

 

 

 

Ecuadorian

Origen andino * Tolerante a temperaturas bajas

 

Velocidad colonizacion

Lenta-media

 

Rendimiento

Medio

 

Tamano carpoforos

Grande – tallos notablemente largos

 

Facilidad de cultivo

Media-alta

 

Velocidad de pinning

Media

 

Potencia relativa

Media

 

Morfologia

Tallos notablemente largos y finos. Sombreros medianos marron-canela.

 

Para quien:

Cultivadores sin control de temperatura estable – tolera 20-22 C mejor que otras.

 

 

 

Mazatapec

Origen mexicano * Robustez y consistencia

 

Velocidad colonizacion

Lenta

 

Rendimiento

Medio

 

Tamano carpoforos

Medio-grande

 

Facilidad de cultivo

Media

 

Velocidad de pinning

Lenta pero consistente

 

Potencia relativa

Media – experiencia considerada mas espiritual

 

Morfologia

Sombrero marron oscuro, ondulado. Tallo delgado. Carpoforos elegantes.

 

Para quien:

Cultivadores interesados en la dimension espiritual ademas del rendimiento.

 

 

 

Penis Envy (PE)

La mas potente * Solo para cultivadores con experiencia

 

Velocidad colonizacion

LENTA – micelio fino y rizomorfoso

 

Rendimiento

Bajo-medio

 

Tamano carpoforos

Medio – muy densos y carnosos

 

Facilidad de cultivo

BAJA – requiere experiencia previa

 

Velocidad de pinning

Lenta y poco predecible

 

Potencia relativa

MUY ALTA – estimado 2-3x por encima de GT

 

Morfologia

Sombrero pequeno y convexo. Tallo muy grueso. Sin umbo. Sin velo en muchos ejemplares.

 

Para quien:

Cultivadores con experiencia demostrada en 3+ ciclos exitosos con otras cepas.

 

 

 

Tabla Comparativa – Resumen de todas las cepas

 

 

 

Cepa

Velocidad

Rendimiento

Dificultad

Potencia

Para quien

 

GT

Rapida

Alto

MUY BAJA

Media

Primera cepa siempre

 

B+

Rapida

Alto

MUY BAJA

Media

Maximizar rendimiento

 

Transkei

MUY RAPIDA

Medio-alto

Baja

Media-alta

Ciclos rapidos

 

Albino A+

Media-rapida

Medio

Media

Media-alta

Estetica unica

 

Ecuadorian

Lenta-media

Medio

Media-alta

Media

Sin control temperatura

 

Mazatapec

Lenta

Medio

Media

Media

Experiencia espiritual

 

Penis Envy

LENTA

Bajo-medio

BAJA

MUY ALTA

Cultivadores expertos

 

 

 

BLOQUE 1

Propagacion

 

Sello de esporas * Del sello a la jeringa * Cultivo liquido

 

 

 

04

 

DEL SELLO A LA JERINGA

Proceso completo * Sello * Lectura * Conservacion * Jeringa

 

 

 

CAPITULO 04

DEL SELLO DE ESPORAS A LA JERINGA

 

 

Proceso completo * Sello * Lectura * Conservacion * Jeringa de esporas diluidas

 

 

D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos

 

 

 

Este capitulo cubre el flujo completo e inseparable: hacer el sello de esporas del ejemplar donante y convertirlo en una jeringa de esporas lista para inocular. Son dos pasos del mismo proceso – el sello no tiene utilidad sin la jeringa.

 

 

 

PARTE 1 – Hacer el Sello de Esporas

 

 

 

Eleccion del ejemplar donante

 

Criterio

Por que importa

 

Velo recien roto o rasgandose por los bordes

Momento optimo de madurez esporogonica. Esporas maduras y abundantes.

 

Sombrero empezando a aplanarse pero aun convexo

El momento exacto: esporas maduras, aun no dispersadas.

 

Sin signos de contaminacion

Cualquier mancha verde o amarilla contamina el sello entero.

 

Primer o segundo flush

Los primeros flushes dan ejemplares con mayor vigor genetico.

 

Tallo firme, sombrero intacto

El dano fisico altera la deposicion del patron.

 

 

 

Demasiado pronto (velo intacto): esporas inmaduras, sello vacio. Demasiado tarde (polvo negro en sustrato): la mayoria ya deposito. El momento exacto es cuando el velo se esta rasgando por los bordes.

 

 

 

Material necesario

 

Material

Especificacion

 

Papel de aluminio grueso

Cuadrados de 15×15 cm. No papel – se pega al sello.

 

Vaso o bol de cristal

Boca ancha. Limpio y desinfectado con alcohol.

 

Alcohol isopropilico 70%

Para desinfectar superficie, vaso y aluminio.

 

Guantes de nitrilo

Obligatorio. No tocar el sombrero con piel desnuda.

 

Bisturi o tijeras limpias

Para separar sombrero del tallo.

 

Bolsas zip pequenas

Para conservar cada sello por separado.

 

Silica gel

Para conservacion a largo plazo. Farmacia o Amazon.

 

 

 

1

Preparar el entorno

Limpiar superficie con alcohol. Dejar secar – el alcohol humedo inhibe la deposicion. Desinfectar el vaso por dentro y por fuera. Cortar cuadrados de aluminio y pasar algodon con alcohol por la cara receptora. Dejar secar.

 

 

 

2

Separar el sombrero

Con bisturi desinfectado, cortar el tallo lo mas cerca posible del sombrero. Manipular el sombrero por los bordes, nunca por las laminillas.

 

 

 

3

Colocar sombrero boca abajo

Laminillas en contacto directo con el aluminio. Centrar dejando margen por todos los lados.

 

 

 

4

Cubrir con el vaso

Vaso boca abajo encima del sombrero. Crea microambiente humedo que facilita la deposicion y evita que corrientes de aire dispersen las esporas.

 

 

 

5

Deposicion – 4-24 horas

Para sellos densos: 8-12 horas. El tiempo afecta a la densidad del sello.

 

 

 

6

Retirar el sombrero y sellar inmediatamente

Levantar el vaso, retirar el sombrero con movimiento suave y vertical. Doblar el aluminio sobre si mismo de forma que la zona del sello quede completamente cubierta.

 

 

 

Como leer un sello de esporas

 

Aspecto del sello

Interpretacion

 

Denso, negro intenso, patron radial claro

Ejemplar maduro. Esporas abundantes. Excelente.

 

Fino, gris-violaceo

Ejemplar algo inmaduro o pequeno. Usable.

 

Casi invisible

Inmaduro o agotado. Pobre viabilidad.

 

Manchas de colores (verde, amarillo)

Contaminado. Desechar sin abrir.

 

 

 

Conservacion del sello

 

Lugar

Duracion

Nota

 

Nevera (4 C), oscuridad

6-12 meses

Optimo.

 

Temperatura ambiente, oscuridad

1-3 meses

Aceptable si no tienes nevera.

 

Congelador con silica seca

2-5+ anos

Optimo para biblioteca genetica larga.

 

 

 

PARTE 2 – De Sello a Jeringa de Esporas

 

 

 

La jeringa de esporas es el puente entre el sello (la conservacion) y el cultivo. Las esporas del sello se suspenden en agua destilada esteril creando un inoculo liquido listo para inocular grano.

 

 

 

Material necesario

 

Material

Especificacion

Donde conseguirlo

 

Sello de esporas seco

El que acabas de hacer o uno conservado.

 

Agua destilada

Sin cloro. La del supermercado para plancha vale.

Supermercado – 1 EUR

 

Jeringa 10-20 ml con aguja

Esteril. Las de farmacia van bien.

Farmacia

 

Frasco de cristal 50-100 ml

Para esterilizar el agua.

Cualquier frasco de conserva

 

Olla a presion o cazo

Para esterilizar el agua.

 

Alcohol isopropilico 70% y mechero

Desinfeccion y flameado.

Farmacia

 

SAB

Still Air Box o zona sin corrientes.

Caja de plastico grande con dos agujeros.

 

 

 

1

Esterilizar el agua

Agua en frasco de cristal tapado con aluminio. Olla a presion 121C/15 min – o hervir 20 minutos tapado en cazo. Enfriar COMPLETAMENTE antes de usar – minimo 12 horas. El agua caliente mata las esporas en el momento.

 

 

 

2

Preparar el SAB

Desinfectar el interior con alcohol. Dejar secar 5 minutos. Introducir todo el material dentro. Esperar 20-30 minutos sin tocar.

 

 

 

3

Cargar agua en la jeringa

Flamear la aguja hasta rojo. Enfriar 10-15 seg tocando el cristal del frasco. Aspirar 10-15 ml de agua destilada esteril fria.

 

 

 

4

Abrir el sello

Abrir el papel de aluminio con cuidado. No tocar la zona con esporas aunque lleves guantes.

 

 

 

5

Rascar las esporas

Con la punta de la aguja rascar suavemente una zona pequena del sello. Las esporas (polvo negro-violaceo) quedan adheridas a la punta.

 

 

 

6

Disolver en el agua

Introducir la aguja en el agua dentro de la jeringa. Agitar con movimientos circulares suaves. El agua quedara ligeramente turbia o con particulas visibles.

 

 

 

7

Sellar y reposar

Poner el capuchon esteril en la aguja. Etiquetar: especie, cepa, fecha y origen del sello. Reposar 24-48 horas en nevera antes del primer uso.

 

 

 

Errores Frecuentes

 

 

 

Sombrero cosechado demasiado pronto

 

Esporas inmaduras. Sello escaso o completamente vacio. El error mas comun.

 

 

 

No cubrir con vaso

 

Las corrientes de aire dispersan las esporas antes de depositarse. Patron irregular.

 

 

 

Aluminio sin desinfectar

 

Bacterias del ambiente quedan en el sello y lo contaminan durante el almacenamiento.

 

 

 

No secar antes de guardar

 

La humedad del sello fresco genera moho durante el almacenamiento. Secar 30-60 min antes de doblar y guardar.

 

 

 

 

 

05

 

CULTIVO LIQUIDO (LC)

6 medios nutritivos * Preparacion * Inoculacion * Incubacion * Lectura

 

 

 

CAPITULO 05

CULTIVO LIQUIDO (LC)

 

 

6 medios nutritivos * Preparacion * Inoculacion * Incubacion * Lectura

 

 

D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos

 

 

 

 

Jeringa de esporas

Cultivo liquido (LC)

 

Contenido

Esporas sin germinar

Micelio activo y verificado

 

Tiempo hasta colonizacion visible

7-14 dias

3-7 dias

 

Viabilidad garantizada

No – las esporas pueden no germinar

Si – ves el micelio antes de usar

 

Riesgo contaminacion

Mayor – germinacion lenta

Menor – coloniza rapido

 

Verificacion previa al uso

Imposible

Si – grumos visibles a contraluz

 

Coste por uso

Bajo

Muy bajo tras la primera preparacion

 

 

 

PARTE 1 – Los Medios Nutritivos

 

 

 

 

Miel de abeja – el mas usado

 

Ingrediente:

Miel pura de abeja. Sin aditivos ni edulcorantes artificiales.

 

Concentracion:

4% en peso: 4 g de miel por cada 100 ml de agua destilada (40 g por litro).

 

Ventaja:

Simple, barata y muy efectiva. Azucares simples que el micelio asimila facilmente. El mas accesible de todos.

 

Limite:

A concentraciones superiores al 6% favorece la contaminacion bacteriana. Respetar el 4% sin exceder.

 

Donde conseguir:

Cualquier supermercado. Miel de flores sin procesar – 2-4 EUR.

 

 

 

 

Extracto de malta

 

Ingrediente:

Extracto de malta en polvo – el mismo que se usa en el agar MEA.

 

Concentracion:

1-2%: 10-20 g por litro de agua destilada.

 

Ventaja:

Mas complejo nutricionalmente que la miel – azucares, aminoacidos y vitaminas B. El micelio crece mas denso y vigoroso.

 

Limite:

Mas caro que la miel. El medio mas oscuro dificulta la lectura visual de contaminacion.

 

Donde conseguir:

Amazon: extracto de malta en polvo laboratorio. 8-15 EUR/500g.

 

 

 

 

Karo / Sirope de maiz

 

Ingrediente:

Sirope de maiz transparente (Karo light o equivalente). Sin colorantes.

 

Concentracion:

4%: 40 ml por litro de agua destilada.

 

Ventaja:

Glucosa pura y limpia. Medio completamente transparente – la mejor visibilidad para detectar contaminacion.

 

Limite:

Menos nutritivo que la miel o el extracto de malta. Dificil de encontrar en Espana.

 

Donde conseguir:

Amazon: Karo light corn syrup.

 

 

 

Resumen comparativo de medios

 

Medio

Concentracion

Velocidad micelio

Visibilidad

Dificultad

 

Miel

4%

Buena

Alta – claro

Minima – primera opcion

 

Extracto de malta

1-2%

Muy buena

Media – algo turbio

Baja

 

Melaza de cana

2-3%

Buena

Muy baja – muy oscuro

Media

 

Karo / sirope maiz

4%

Buena

Maxima – completamente claro

Baja

 

Agua de coco

50-100%

Variable

Alta

Media

 

 

 

PARTE 2 – Material Necesario

 

 

 

Material

Especificacion

Donde conseguirlo

Frasco de cristal 250-500 ml

Con tapa perforada y filtro de polyfill o algodon en el agujero.

Cualquier frasco de conserva limpio.

Agua destilada

Sin cloro. La del supermercado para plancha de vapor vale perfectamente.

Supermercado – 1 EUR el litro.

Ingrediente nutritivo

Miel, extracto de malta, o el medio elegido.

Segun el medio elegido.

Bola de acero inoxidable o canica

De 10-15 mm de diametro. Va dentro del frasco. Al agitar rompe los fragmentos de micelio.

Amazon: bola acero inoxidable 15mm.

Olla a presion

Para esterilizar el medio.

Jeringa 10-20 ml esteril con aguja

Para inocular y extraer LC.

Farmacia.

Alcohol isopropilico 70% y mechero

Desinfeccion y flameado.

Farmacia.

SAB

Still Air Box – entorno esteril para trabajar.

Caja de plastico grande con dos agujeros.

 

 

La bola de acero no es opcional – es la diferencia entre un LC denso y uniforme y uno con grumos compactos inutilizables. Agitar sin ella no rompe los agregados de micelio y el medio queda con zonas sin colonizar.

 

 

 

PARTE 3 – Preparacion del Medio Paso a Paso

 

 

 

Cantidades para frasco de 250 ml (referencia miel)

 

Ingrediente

Cantidad

 

Agua destilada

250 ml

 

Miel pura

10 g (4%)

 

Bola de acero inoxidable

1 unidad – dentro del frasco

 

 

 

1

Meter la bola de acero en el frasco

Primero la bola – luego el liquido. Si la metes al final puedes salpicar el medio ya preparado.

 

 

 

2

Disolver el ingrediente nutritivo en agua destilada fria

Anadir el agua primero, luego la miel u otro ingrediente. Agitar hasta disolucion completa y homogenea.

 

 

 

3

Preparar la tapa correctamente

Perforar la tapa con un clavo o taladro – agujero de 5-8 mm. Rellenar el agujero con algodon o polyfill compactado. Cubrir con papel de aluminio ajustado.

 

 

 

4

Esterilizar

121 C / 15 PSI durante 20-25 minutos. El medio liquido esteriliza mas rapido que el grano porque el calor penetra mejor en liquido.

 

 

 

5

Enfriar completamente

Minimo 8-12 horas. Inocular con el frasco caliente mata el inoculo en el acto.

 

 

 

6

Verificar el medio 3-5 dias antes de inocular

Dejar a temperatura ambiente 3-5 dias. Cualquier contaminacion del proceso de preparacion sera visible.

 

 

 

PARTE 4 – Inoculacion, Incubacion y Lectura

 

 

 

Parametro

P. cubensis

P. cyanescens

 

Temperatura

23-26 C

28-30 C

 

Luz

Oscuridad o luz tenue

Oscuridad o luz tenue

 

Agitacion

Una vez al dia, movimientos circulares suaves

Idem

 

Tiempo hasta LC activo

5-14 dias desde esporas * 3-7 dias desde LC

Idem

 

 

 

Dias

Lo que ves

Interpretacion

 

1-2

Nada visible o turbidez muy ligera

Normal – el micelio se esta estableciendo.

 

3-5

Primeros grumos blancos flotantes muy pequenos

La germinacion arranco. Buen signo.

 

5-10

Grumos visibles y en aumento, liquido ligeramente turbio

Colonizacion activa en curso.

 

10-14

Grumos abundantes, liquido turbio blanco al agitar

LC activo – listo para usar o conservar.

 

Mas de 14 sin cambios

Liquido transparente sin grumos

LC no arranco o contaminacion temprana.

 

 

 

Como leer el LC a contraluz

 

Lo que ves

Significa

Accion

 

Grumos blancos que se dispersan y reagrupan, liquido blanco turbio

LC activo y sano

Usar o conservar

 

Liquido completamente transparente sin grumos

LC sin colonizar o degradado

Esperar mas dias o descartar

 

Verde, negro, rosa u otro color

Contaminacion por moho

Descartar – no abrir en interior

 

Amarillo intenso o marron con olor agrio

Contaminacion bacteriana

Descartar

 

 

 

PARTE 5 – Cantidad a Inocular por Frasco de Grano

 

 

 

Tamano del frasco

LC recomendado

Minimo viable

 

250 ml (frasco pequeno)

2-3 ml

1 ml

 

500 ml (frasco estandar)

3-5 ml

2 ml

 

1000 ml (frasco grande)

5-8 ml

3 ml

 

1500-2000 ml (frasco muy grande)

8-12 ml

5 ml

 

 

 

Errores Frecuentes

 

 

 

Agua del grifo sin desinfectar

 

El cloro inhibe el micelio. Aunque en pequenas cantidades no lo mata, ralentiza significativamente el crecimiento.

 

 

 

Concentracion de nutrientes demasiado alta

 

Por encima del 6% en miel o 3% en extracto de malta el medio favorece mas la bacteria que el micelio.

 

 

 

No meter la bola de acero

 

El micelio forma agregados compactos. El LC resultante tiene grumos inutilizables.

 

 

 

No verificar el medio 3-5 dias antes de inocular

 

Una contaminacion en el medio apareceria antes de inocularlo. Si se inocula sin verificar se pierde tiempo y material.

 

 

 

 

 

BLOQUE 2

Proceso de Cultivo

 

Esterilizacion * Ciclo completo * Tips y errores

 

 

 

06

 

ESTERILIZACION Y PASTEURIZACION

Grano a 121C * CV a 80C * Metodo olla convencional

 

 

 

CAPITULO 06

ESTERILIZACION Y PASTEURIZACION

 

 

Grano a 121C / 15 PSI * CV a 80C * Metodo olla convencional

 

 

D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos

 

 

 

PARTE 1 – Esterilizacion del Grano en Olla a Presion

 

 

 

Opciones de tapa

 

Opcion

Descripcion

Valoracion

 

A – Algodon

4 agujeros de 5mm, algodon por dentro, aluminio por fuera

Funciona, se empapa con el tiempo

 

B – Polyfill

Trozo de relleno sintetico sellado con goma o silicona

Mejor: no se compacta ni empapa

 

 

 

Tiempos de esterilizacion

 

Tamano del frasco

Tiempo a 15 PSI

 

400-500 ml

90 minutos

 

750-1000 ml

2 horas

 

1500-2000 ml

2 horas 30 minutos

 

 

 

Estos tiempos son desde que la olla ALCANZA los 15 PSI, no desde que la pones al fuego.

 

 

 

1

Fuego alto

Hasta que salga vapor constante por la valvula.

 

 

 

2

Bajar a fuego medio-bajo

Lo justo para mantener 15 PSI sin que suba mas.

 

 

 

3

Contar el tiempo

Desde que el manometro marca 15 PSI.

 

 

 

4

Apagar y dejar enfriar sola

No pongas bajo el grifo. No abras la valvula. El cambio brusco de presion puede aspirar contaminantes.

 

 

 

5

Esperar presion cero + 30 min

Solo cuando el manometro marca 0 y han pasado 30 min mas, abres.

 

 

 

6

Enfriar 12-24 horas

Sobre superficie limpia. No inocules hasta enfriamiento total.

 

 

 

Por que esperar 12-24 h antes de inocular? El frasco caliente mata el inoculo. La condensacion interna es maxima mientras enfria. Un frasco destapado en ese momento se contamina casi seguro.

 

 

 

PARTE 2 – Pasteurizacion del CV

 

 

 

La pasteurizacion a 80 C elimina mohos competidores (Trichoderma, Penicillium) pero preserva la microbiota bacteriana beneficiosa del sustrato. Si esterilizas a 121 C, tambien las eliminas y el CV queda mas vulnerable, no mas seguro.

 

 

 

1

Hidratacion del brick de coco

Un brick de 650 g absorbe ~3-4 litros de agua. Usa agua HIRVIENDO – el calor inicial ya mata buena parte de los mohos superficiales. Vierte sobre el brick en un cubo grande. Deja reposar 30-60 minutos.

 

 

 

2

Mezcla con vermiculita 1:1 en volumen

La vermiculita abre la estructura del sustrato mejorando la aireacion y actua como esponja de humedad.

 

 

 

3

Test de humedad

Aprieta un punado con fuerza. Deben caer 2-3 gotas, no un chorro. Si chorrean mas: anadir vermiculita seca. Si no cae ninguna gota: anadir agua.

 

 

 

Metodos de pasteurizacion

 

Metodo

Temperatura

Tiempo

Notas

 

Horno

82 C

90-120 min

Mas controlable. Bolsa de horno o bandeja con aluminio sellado.

 

Bano maria

80-85 C

90 min

Accesible. Termometro obligatorio.

 

Olla convencional

80 C interior

90 min

El mas facil. Tapa con aluminio. El vapor pasteuriza uniforme.

 

 

 

Comparativa final: Grano vs CV

 

 

Grano

CV

 

Proceso

Esterilizacion (121 C / 15 PSI)

Pasteurizacion (80 C)

 

Objetivo

Eliminar TODO, incluidas endosporas

Eliminar mohos, conservar bacterias beneficiosas

 

Herramienta

Olla a presion (obligatoria)

Horno, bano maria u olla convencional

 

Tiempo

90 min – 2 h 30 min segun volumen

90-120 minutos

 

Si fallas

Contaminacion explosiva en colonizacion

CV mas vulnerable pero recuperable

 

 

 

07

 

PSILOCYBE CUBENSIS GUIA COMPLETA

Preparacion del grano * 8 fases * Del grano a los flushes

 

 

 

CAPITULO 07

PSILOCYBE CUBENSIS – GUIA COMPLETA DE CULTIVO

 

 

Preparacion del grano * 8 fases completas * Del grano a los flushes * Sustrato CV * Mezcla spawn:bulk detallada

 

 

D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos

 

 

 

ANTES DE EMPEZAR – Preparacion del Grano

 

 

 

Grano

Valoracion

Para quien

 

Centeno

El mejor. Duro, no se revienta facil, colonizacion rapida.

Primera opcion siempre

 

Trigo

Muy bueno, similar al centeno.

Primera o segunda opcion

 

Mijo

Excelente para principiantes – grano pequeno, mas puntos de inoculacion.

Principiantes

 

Cebada

Bueno pero algo mas blando – mas facil de pasarse en la coccion.

Intermedio

 

Maiz

Valido pero lento – grano grande, pocas superficies de contacto.

No recomendado para empezar

 

 

 

1

Lavar el grano

En colador o bol grande, anadir agua abundante y remover con la mano. Escurrir y repetir 3-4 veces hasta que el agua salga relativamente clara.

 

 

 

2

Remojar 12-24 horas

Cubrir el grano con agua fria y dejar en remojo a temperatura ambiente. Pre-hidrata el interior del grano de forma gradual.

 

 

 

3

Cocer el grano

Escurrir el agua de remojo. Cubrir con agua nueva. Llevar a ebullicion y mantener a fuego medio segun los tiempos de la tabla.

 

 

 

4

Test del grano correcto

Cortar un grano por la mitad: el interior debe estar hidratado – blanco uniforme hasta el centro sin zona seca. Si hay punto duro: mas coccion. Presionar con los dedos: debe ceder con presion moderada sin deshacerse en papilla.

 

 

 

5

Escurrir y secar superficialmente

Escurrir en colador. Extender en bandeja en CAPA FINA – no apilado. Reposar 30-60 minutos. El grano tiene que estar hidratado por dentro pero SECO AL TACTO por fuera.

 

 

 

6

Llenar los frascos

Llenar hasta 2/3 de la capacidad – NUNCA hasta arriba. El tercio vacio permite agitar durante la colonizacion.

 

 

 

7

Tapar y esterilizar

Tapa perforada con algodon o polyfill cubierto con papel de aluminio. Olla a presion: 121 C / 15 PSI / 90 MINUTOS. Presion baja sola. Esperar 10 min antes de abrir.

 

 

 

8

Enfriar completamente

Minimo 12 horas, idealmente una noche entera. Si tienes dudas, espera mas.

 

 

 

Grano

Sin remojo previo

Con remojo 12-24 h

 

Centeno

15-20 min

10-12 min

 

Trigo

15-20 min

10-12 min

 

Mijo

8-10 min

5-7 min

 

Cebada

20-25 min

12-15 min

 

Maiz

30-40 min

20-25 min

 

 

 

Humedad superficial excesiva = contaminacion casi segura. El secado de 30-60 min no es opcional.

 

 

 

LAS 8 FASES DEL CULTIVO COMPLETO

 

 

 

FASE 1  —  Inoculacion del grano

 

Del LC o jeringa de esporas al frasco de grano esterilizado

 

 

 

Verificacion

Correcto

Problema

 

Temperatura

Frio al tacto – temperatura ambiente

Si esta tibio: esperar mas

 

Aspecto del grano

Seco, suelto, no apelmazado

Si esta humedo: riesgo de contaminacion

 

Color

Beige-dorado uniforme

Si hay manchas de color: contaminado

 

 

 

1

Preparar el SAB

Desinfectar con alcohol. Esperar 20-30 min de reposo.

 

 

 

2

Flamear la aguja

Hasta rojo vivo. Enfriar tocando el cristal del frasco.

 

 

 

3

Inocular

Insertar la aguja por el puerto de inyeccion o a traves del algodon. Distribuir el inoculo en varios puntos – no todo en el centro. 1-3 ml de LC o 1-2 ml de jeringa de esporas por frasco de 500 ml.

 

 

 

4

Sellar y etiquetar

Cinta adhesiva sobre el orificio de inyeccion o micropore. Etiquetar: cepa, fecha de inoculacion.

 

 

 

FASE 2  —  Colonizacion del grano

 

El micelio se establece y expande por todo el frasco

 

 

 

Parametro

Valor

Nota

 

Temperatura

23-26 C

Usar mat de calor con termostato – obligatorio

 

Luz

Oscuridad o luz tenue

La luz directa no beneficia en esta fase

 

Agitacion

Cuando el micelio haya avanzado 30-40%

Agitar rompe los grumos y acelera la colonizacion

 

 

 

Dias

Lo que ves

 

1-3

Nada visible o primeros filamentos blancos en los puntos de inoculacion

 

3-7

Expansion visible desde los puntos – micelio blanco algodonoso o rizomorfoso

 

7-14

Colonizacion progresiva del frasco

 

14-21

Frasco completamente blanco y consolidado

 

 

 

No inocules el bulk hasta que el frasco este 100% blanco Y lleve 3-5 dias extra de consolidacion tras la colonizacion completa.

 

 

 

FASE 3  —  Preparacion del Bulk CV

 

Fibra de coco + vermiculita pasteurizada

 

 

 

Componente

Proporcion

Funcion

 

Fibra de coco hidratada

50%

Base del sustrato – retencion de humedad

 

Vermiculita grado medio

50%

Drenaje y aireacion – evita encharcamiento

 

 

 

1

Hidratar la fibra de coco

Un ladrillo de coco de 650g da aproximadamente 8 litros hidratado. Anadir agua caliente progresivamente hasta que toda la fibra este hidratada.

 

 

 

2

Mezclar con vermiculita

Proporciones 1:1 en volumen. Mezclar bien hasta que sea homogeneo.

 

 

 

3

Test de humedad

Test del puno: apretar fuerte un punado. Deben caer 2-3 gotas, nunca un chorro.

 

 

 

4

Pasteurizar a 80 C – NO esterilizar

Horno, bano maria u olla convencional tapada. 80-82 C durante 90 minutos. NO usar olla a presion. Enfriar completamente – minimo 12 horas.

 

 

 

FASE 4  —  Mezcla Spawn:Bulk

 

Distribuir los puntos de crecimiento por todo el volumen

 

 

 

Ratio

Velocidad

Riesgo contaminacion

Uso recomendado

 

1:1

Muy rapida

Bajo

No necesario para cubensis

 

1:2

Rapida

Bajo

El mas recomendado para empezar

 

1:3

Normal

Moderado

Estandar una vez dominado

 

1:4+

Lenta

Alto

No recomendado

 

 

 

1

Desinfectar el contenedor

Alcohol isopropilico en todas las superficies. Dejar evaporar completamente.

 

 

 

2

Agitar el frasco de spawn ANTES de abrir

Agitar con fuerza 15-20 segundos. Rompe los fragmentos de micelio. El paso que mas gente salta.

 

 

 

3

Verter la mitad del bulk, luego el spawn, luego el resto del bulk

Tres estratos: bulk – spawn – bulk. Facilita la mezcla uniforme.

 

 

 

4

Mezclar con las manos enguantadas

Movimientos envolventes de abajo hacia arriba.

 

 

 

5

Nivelar y tapar

Profundidad ideal: 5-8 cm. Tapar con film perforado o polyfill. Oscuridad a 23-26 C.

 

 

 

FASE 5  —  Colonizacion del Bulk

 

El micelio se consolida en todo el volumen del sustrato

 

 

 

Dias

Lo que ves

 

1-2

Nada visible. El micelio se esta estableciendo.

 

3-5

Primeros filamentos blancos alrededor de los granos de spawn.

 

5-8

Filamentos avanzando hacia el bulk, zonas blancas creciendo.

 

8-12

Superficie progresivamente blanca.

 

10-18

Colonizacion completa – superficie 100% blanca y densa.

 

 

 

FASE 6  —  Casing Layer (opcional pero recomendado)

 

Capa de cobertura sobre el bulk colonizado. Mejora el pinning, mantiene la humedad superficial.

 

 

 

Opcion de casing

Composicion

pH aprox.

 

Turba + cal hidratada 10:1 (clasico)

10 partes turba + 1 parte cal

7.0-7.5

 

Vermiculita humeda

Vermiculita sola ligeramente humeda

Variable

 

Fibra de coco + cal 10:1

10 partes coco + 1 parte cal

6.5-7.0

 

 

 

1

Preparar el casing

Mezclar turba y cal en seco 10:1. Hidratar hasta que al apretar caiga 1-2 gotas maximo. pH objetivo 7.0-7.5. Pasteurizar a 80 C durante 60 min. Enfriar completamente.

 

 

 

2

Aplicar

Capa uniforme de 1-1.5 cm sobre la superficie del bulk colonizado. Mas de 2 cm: los pins no llegan a la superficie.

 

 

 

3

Cambiar a condiciones de fructificacion

Temperatura: bajar 3-4 C. HR: 90-95%. FAE activo: 3-4 ventilaciones al dia. Luz indirecta: 12 h luz / 12 h oscuridad.

 

 

 

FASE 7  —  Fructificacion y Cosecha

 

Del primer pin a la cosecha. Cosechar con el velo tensandose o recien rasgado. Girar suavemente la base del tallo en sentido horario y tirar hacia arriba. No cortar – los munones quedan y se contaminan.

 

 

 

FASE 8  —  Flushes Siguientes

 

Repetir el ciclo 2-4 veces con el mismo bloque

 

 

 

1

Retirar munones

Con pinzas o bisturi desinfectado. Son tejido muerto y se contaminan rapidamente. Hacerlo siempre antes de rehidratar.

 

 

 

2

Cold shock

Sumergir el bloque en agua fria (4-10 C) durante 12-24 horas. El descenso termico es el principal estimulo del segundo flush.

 

 

 

3

Escurrir y volver a condiciones de fructificacion

Sacar el bloque, dejar escurrir 15-30 minutos y volver a la camara.

 

 

 

4

Repetir

Un bloque sano produce 2-4 flushes. Los primeros suelen ser los mas abundantes.

 

 

 

Flush

Rendimiento esperado

Nota

 

1

El mas abundante

70-80% del rendimiento total del bloque

 

2

Bueno

20-25% del rendimiento total

 

3

Moderado

El cold shock es critico aqui

 

4+

Escaso

Valorar si compensa seguir

 

 

 

08

 

TIPS Y ERRORES FRECUENTES

Referencia rapida * Lo que falla y como evitarlo

 

 

 

CAPITULO 08

TIPS Y ERRORES FRECUENTES

 

 

Referencia rapida * Lo que falla y como evitarlo

 

 

D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos

 

 

 

Errores mas costosos

 

 

 

Inocular con el frasco caliente

 

Mata el inoculo en el acto. Resultado: frasco que no coloniza. Siempre enfriar minimo 12 horas.

 

 

 

Grano demasiado humedo al esterilizar

 

La humedad superficial es el caldo de cultivo para bacterias. El secado superficial de 30-60 min es obligatorio.

 

 

 

No agitar el frasco a los 5-7 dias

 

Colonizacion 30-50% mas lenta de lo posible. El agitado distribuye el micelio por el grano entero.

 

 

 

Saltarse el cold shock entre flushes

 

Reduce significativamente el segundo y tercer flush.

 

 

 

Casing demasiado grueso (+3 cm)

 

Los pins tardan mas y salen deformes.

 

 

 

Luz directa

 

No mata el cultivo pero altera la morfologia. Luz indirecta o fluorescente tenue.

 

 

 

Tips de oro poco mencionados

 

 

 

Trabaja siempre de lo mas limpio a lo mas sucio – primero inoculas, luego preparas el bulk, nunca al reves.

 

 

 

El olor es un detector excelente – micelio sano huele a tierra fresca. Agrio, amoniacal o fetido = contaminacion.

 

 

 

Si dudas de un frasco, espera 24 h mas – los contaminantes se revelan solos. No contamines el bulk con un frasco dudoso.

 

 

 

Polyfill es mejor que algodon – no se empapa, no se compacta, FAE mas consistente.

 

 

 

Agua destilada o hervida fria para pulverizar – el cloro del grifo puede inhibir el micelio en superficie.

 

 

 

El micelio rizomorfoso (cordones gruesos y definidos) es mas vigoroso que el algodonoso – prioriza clonar sectores rizomorfosos.

 

 

 

Los contenedores de plastico oscuro reducen el estres por luz durante la colonizacion del bulk.

 

 

 

Documenta cada ciclo: peso fresco, flushes, dias de colonizacion. Los datos propios son mas utiles que cualquier guia general.

 

 

 

 

 

BLOQUE 3

Problemas y Soluciones

 

Contaminacion * Troubleshooting de fructificacion

 

 

 

09

 

PROBLEMAS Y SOLUCIONES

Contaminacion: guia visual * Protocolos * Troubleshooting

 

 

 

CAPITULO 09

PROBLEMAS Y SOLUCIONES

 

 

Contaminacion: guia visual * Protocolos por fase * Troubleshooting de fructificacion

 

 

D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos

 

 

 

El objetivo no es cero contaminacion ni cero problemas. El objetivo es detectarlos pronto, actuar rapido y entender la causa para reducirlos en el siguiente ciclo.

 

 

 

PARTE 1 – Contaminacion: Guia Visual y Protocolos

 

 

 

Trichoderma spp. – El mas comun

 

 

Aspecto:

Empieza como micelio blanco indistinguible. A los 3-5 dias vira a verde intenso, primero en parches, luego extendiendose. El verde es la esporulacion masiva.

 

Color:

Verde brillante a verde oscuro. A veces verde-azulado.

 

Olor:

A tierra humeda al principio, luego mas intenso y penetrante.

 

Origen:

Sustrato insuficientemente pasteurizado, contaminacion cruzada, esporas en el ambiente.

 

Peligro:

MEDIO – actuar en 24-48 h desde que aparece el verde. Se dispersa rapido.

 

 

 

Aspergillus spp.

 

 

Aspecto:

Manchas negras, marrones oscuras o amarillo-verdosas. Puede ser polvo seco o manchas densas.

 

Color:

Negro, marron oscuro, amarillo-verde segun la especie.

 

Olor:

Mohoso, terroso, humedad cerrada.

 

Origen:

Grano insuficientemente esterilizado, humedad excesiva, esterilizacion interrumpida.

 

Peligro:

ALTO – algunas especies producen micotoxinas. NO abrir en interior cerrado.

 

 

 

Penicillium spp.

 

 

Aspecto:

Similar a Trichoderma al inicio. Verde-azulado a azul-grisaceo. Textura mas polvorosa.

 

Color:

Azul-verde, azul-gris. Mas azul que el verde puro de Trichoderma.

 

Olor:

Mohoso, similar a pan viejo.

 

Origen:

Los mismos que Trichoderma. Muy comun en sustratos de grano.

 

Peligro:

MEDIO – actuar igual que con Trichoderma.

 

 

 

Contaminacion bacteriana

 

 

Aspecto:

No produce colores llamativos. Senales: micelio amarillo, liquido viscoso en fondo del frasco, grano blando y apelmazado.

 

Color:

Sin color propio. Micelio amarillento o normal con halos.

 

Olor:

Agrio, amoniacal o fetido al acercar la nariz a la tapa sin abrir.

 

Origen:

Tiempo de esterilizacion insuficiente, grano con exceso de humedad superficial.

 

Peligro:

MEDIO – pero siempre descartar. Las bacterias no se contienen.

 

 

 

Neurospora – El pan rosado

 

 

Aspecto:

Micelio rosa a naranja vivo, muy aereo y esponjoso. Crece extremadamente rapido – puede colonizar un frasco en 24-48 horas.

 

Color:

Rosa, salmon, naranja brillante. Inconfundible.

 

Olor:

Neutro o ligeramente dulzon.

 

Origen:

Muy dificil de erradicar una vez presente. Las esporas se depositan en todas las superficies.

 

Peligro:

MUY ALTO – dispersion masiva. Protocolo de emergencia inmediato.

 

 

 

Tabla de identificacion rapida

 

 

 

Color

Textura

Olor

Agente

Peligro

 

Verde brillante

Algodonoso > polvoroso

Penetrante

Trichoderma

Medio

 

Azul-verde, azul-gris

Polvoroso

Mohoso

Penicillium

Medio

 

Negro, marron oscuro

Denso o polvoroso

Mohoso cerrado

Aspergillus

ALTO – no abrir

 

Rosa, naranja vivo

Esponjoso, muy aereo

Neutro

Neurospora

MUY ALTO – emergencia

 

Sin color + olor

Grano apelmazado

Agrio, amoniacal

Bacterias

Siempre descartar

 

 

 

Contaminacion vs reaccion normal del micelio

 

 

 

Lo que ves

Contaminacion?

Explicacion

 

Micelio azulado al tocar

NO

Oxidacion de psilocina – normal y deseable.

 

Gotas amarillas aisladas sin olor

No necesariamente

Exudado metabolico normal. Vigilar si aumenta.

 

Olor a tierra fresca

NO

Micelio sano.

 

Olor a humedad cerrada sin color

POSIBLEMENTE

Inicio de bacteria. Revisar en 24 h.

 

 

 

Protocolos de actuacion por fase

 

 

 

Frasco de grano

 

Contaminacion temprana (<50% colonizacion): descartar sin dudar. El grano esta perdido.

 

 

 

Contaminacion tardia (>80% blanco): si es un parche pequeno de Trichoderma aislado y el micelio lo esta rodeando, espera 24-48 h. Si crece activamente: descartar.

 

 

 

NUNCA usar un frasco con contaminacion para G2G ni para inocular bulk.

 

 

 

Descarte seguro: bolsa zip cerrada sin abrir, fuera del espacio de cultivo.

 

 

 

 

 

Bulk CV durante colonizacion

 

Verde localizado (<10% superficie): aislar fisicamente cortando con bisturi desinfectado. Cubrir con vermiculita seca. Si avanza en 48 h: descartar.

 

 

 

Verde extendido (>20% superficie): descartar. Sin recuperacion posible.

 

 

 

Contaminacion bacteriana (olor, grano apelmazado): descartar siempre.

 

 

 

 

 

PARTE 2 – Troubleshooting de Fructificacion

 

 

 

#1

No aparecen pins tras el casing

 

 

CO2 acumulado – causa mas frecuente. Aumentar FAE a 4-5 ventilaciones al dia.

 

 

Temperatura no bajo respecto a colonizacion – el descenso termico es trigger principal. Bajar 3-4 C.

 

 

Casing demasiado seco – si la superficie se ve palida, pulverizar mas las paredes.

 

 

Cold shock de rescate: nevera a 4-8 C durante 12-24 h si llevas 12+ dias sin pins. Funciona en el 70% de los casos.

 

 

 

#2

Pins que abortan antes de desarrollarse

 

 

Bajada brusca de HR – causa mas comun. Ventilaciones mas cortas y pulverizar inmediatamente despues.

 

 

Temperatura demasiado alta – por encima de 26 C en cubensis los pins tienden a abortar.

 

 

Contaminacion bacteriana incipiente – si abortan con color amarillo-marron y hay olor, revisar bloque.

 

 

 

#3

Tallos muy largos y sombreros pequenos

 

 

Exceso de CO2 casi siempre – el micelio crece hacia arriba buscando aire fresco.

 

 

Solucion: aumentar FAE con mas ventilaciones o agujeros mas grandes en el contenedor.

 

 

 

#6

Overlay – superficie densa sin pins

 

 

Causa: FAE insuficiente durante la colonizacion del bulk. El micelio crecio hacia arriba.

 

 

Solucion 1: rascar suavemente la superficie con tenedor o bisturi esteril.

 

 

Solucion 2: aplicar capa fina de casing fresco encima.

 

 

 

#7

Segundo flush muy pobre o inexistente

 

 

Cold shock no realizado – es el principal estimulo del segundo flush.

 

 

Rehidratacion insuficiente – el bloque debe sumergirse 12-24 horas, no 2-3 horas.

 

 

Condiciones de fructificacion insuficientes – revisar temperatura, HR y FAE.

 

 

 

#8

Carpoforos con azulado intenso

 

 

NO ES UN PROBLEMA – el azulado es oxidacion de psilocina. Senal de potencia.

 

 

No afecta a la potencia ni a la seguridad.

 

 

 

 

 

BLOQUE 4

Tecnicas Intermedias

 

G2G * Preservacion del cultivo liquido

 

 

 

10

 

G2G: GRANO A GRANO

Multiplicacion de spawn * Expansion exponencial * Limites por generacion

 

 

 

CAPITULO 10

G2G: GRANO A GRANO

 

 

Multiplicacion de spawn * Expansion exponencial * Limites por generacion

 

 

D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos

 

 

 

Regla practica: maximo 4-5 generaciones antes de volver a inocular desde esporas, LC o clon fresco. La degeneracion genetica es silenciosa.

 

 

 

Material Necesario

 

 

 

Material

Especificacion

 

Frasco de grano colonizado (fuente)

100% blanco, sin ningun signo de contaminacion. Cualquier duda = no usar.

 

Frascos de grano esteril (destino)

Preparados segun cap. 06. Completamente frios antes de usar.

 

Alcohol isopropilico 70%

Desinfeccion de tapas y superficies de trabajo.

 

Guantes de nitrilo y mascarilla

Obligatorio en todo el proceso.

 

SAB

Entorno limpio sin corrientes de aire.

 

 

 

Proceso Paso a Paso

 

 

 

Preparacion

 

1

Verificar el frasco fuente

100% blanco, sin manchas de ningun color. Cualquier duda – no lo uses. Un frasco contaminado inoculando 10 frascos nuevos = 10 frascos contaminados.

 

 

 

2

Verificar frascos destino

Grano esteril y completamente frio. Si aun estan tibios, espera.

 

 

 

3

Preparar el entorno

SAB limpio. Alcohol en guantes y superficie. Deja reposar el aire del SAB 15-20 minutos antes de empezar.

 

 

 

La transferencia

 

4

Agitar el frasco fuente

ANTES de abrir: agita con fuerza para romper y fragmentar el micelio colonizado. Los fragmentos pequenos son los puntos de inoculacion.

 

 

 

5

Desinfectar las tapas

Alcohol en la tapa del frasco fuente y en la tapa del frasco destino. Deja secar.

 

 

 

6

Apertura controlada en SAB

Abre el frasco fuente. Inmediatamente abre el frasco destino. Trabaja rapido.

 

 

 

7

Transferir el grano

METODO A (recomendado) – Volcado directo: inclina el frasco fuente sobre el destino y vierte una parte del grano colonizado. METODO B – Cuchara esteril: mas preciso en cantidad pero mas tiempo expuesto.

 

 

 

8

Cerrar inmediatamente

Los dos frascos sin demora.

 

 

 

9

Agitar el frasco destino

Una vez cerrado, agita para distribuir los fragmentos de micelio uniformemente por todo el grano nuevo.

 

 

 

Tabla de generaciones – limites de G2G

 

 

 

Generacion

Riesgo de degeneracion

Recomendacion

 

G1 a G2

Muy bajo

Siempre hacer

 

G2 a G3

Bajo

Sin problema

 

G3 a G4

Moderado

Aceptable

 

G4 a G5+

Elevado

Volver a tejido o esporas

 

 

 

Cada transferencia G2G es una reproduccion vegetativa. El micelio se replica a si mismo con alta fidelidad, pero pequenos errores de replicacion y la acumulacion de senescencia celular hacen que con cada generacion el micelio sea ligeramente menos vigoroso.

 

 

 

11

 

PRESERVACION DEL CULTIVO LIQUIDO

5 tecnicas * Nevera * LC a LC * Agar inclinado * Criopreservacion con glicerol

 

 

 

CAPITULO 11

PRESERVACION DEL CULTIVO LIQUIDO

 

 

5 tecnicas * Nevera * LC a LC * Agar inclinado * Criopreservacion con glicerol

 

 

D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos

 

 

 

TECNICA
1

LC activo en nevera

 

Principio:

El micelio activo entra en estado de latencia metabolica a 4 C.

 

Material:

Frasco LC activo + tapas limpias + nevera.

 

Proceso clave:

Cerrar bien el frasco. Guardar en nevera a 4 C en oscuridad. Agitar suavemente antes de usar.

 

Duracion:

2-4 meses.

 

Ventaja:

La mas simple. Sin preparacion extra.

 

Limite:

El mas corto de todos.

 

 

 

TECNICA
2

LC a LC – pasaje a fresco

 

Principio:

Transfsieres LC activo a frasco nuevo de medio nutritivo. Equivalente exacto al G2G en liquido.

 

Material:

Frasco LC activo + frasco nuevo con medio esterilizado + jeringa + alcohol + mechero + SAB.

 

Proceso clave:

Flamear aguja. Aspirar 3-5 ml del LC fuente cogiendo fragmentos. Inyectar en frasco destino frio. Agitar. Incubar 5-10 dias.

 

Duracion:

Indefinido en teoria. Maximo practico: 4-5 generaciones antes de volver a tejido.

 

Ventaja:

No necesitas olla a presion para el medio liquido.

 

Limite:

Senescencia acumulada con las generaciones.

 

 

 

TECNICA
3

Agar inclinado en nevera

 

Principio:

El micelio coloniza un tubo de agar inclinado (MEA o PDA) y se conserva en nevera.

 

Material:

Tubos de vidrio con rosca 15-20 ml + MEA o PDA + olla a presion + bisturi + SAB + parafilm.

 

Proceso clave:

Llenar tubos con MEA. Esterilizar 121C/20 min. Inclinar a 30-45 grados al sacar. Inocular con 2-3 gotas LC. Colonizar 5-10 dias. Sellar y nevera.

 

Duracion:

6-12 meses a 4 C.

 

Ventaja:

La forma mas estable de conservar micelio a medio plazo sin glicerol.

 

Limite:

Requiere preparacion de tubos inclinados. Mas trabajo inicial.

 

 

 

TECNICA
4

Criopreservacion con glicerol a -20 C

 

Principio:

El glicerol penetra las celulas del micelio y desplaza el agua intracelular evitando que el hielo rompa las membranas al congelar.

 

Material:

Glicerina pura 99% (farmacia) + agua destilada + frasquitos de cristal + olla a presion + jeringa esteril + SAB + congelador -20 C.

 

Proceso clave:

Preparar solucion glicerol 15%. Esterilizar. Mezclar 1:1 con LC activo. Distribuir en unidades de 3-4 ml. Nevera 60 min. Congelador -20 C.

 

Duracion:

6-18 meses a -20 C.

 

Ventaja:

Criopreservacion real casera. Sin equipamiento de laboratorio.

 

Limite:

Cada descongelacion consume una unidad completa – no se puede recongelar.

 

 

 

TECNICA
5

LC a agar – la mejor combinacion

 

Principio:

El LC proporciona inoculo activo y verificado. El agar permite seleccionar el mejor sector.

 

Material:

LC activo + placas de agar MEA o PDA preparadas.

 

Proceso clave:

Inocular placa desde LC. Incubar 5-7 dias. Identificar mejor sector. Transferir a nuevo LC o grano.

 

Duracion:

 

Ventaja:

Combina lo mejor del LC y el agar. Permite seleccion genetica antes de escalar.

 

Limite:

Requiere trabajo en agar (cap. 12).

 

 

 

Tabla de generaciones LC a LC

 

 

 

Generacion

Riesgo

Recomendacion

 

LC1 a LC2

Muy bajo

Siempre hacer

 

LC2 a LC3

Bajo

Sin problema

 

LC3 a LC4

Moderado

Aceptable

 

LC4 a LC5+

Elevado

Volver a tejido o esporas

 

 

 

Proceso Detallado – Tecnica 4: Criopreservacion con Glicerol

 

 

 

1

Preparar la solucion de glicerol

Glicerina farmaceutica pura 99% (sin aditivos). Mezclar en proporcion 1:4 con agua destilada – resultado: solucion al 20%. Esterilizar a 121C/20 min. Enfriar completamente.

 

 

 

2

Mezclar LC activo + solucion de glicerol

En SAB: aspirar 3-4 ml del LC activo con grumos visibles. Mezclar con igual volumen de solucion de glicerol fria.

 

 

 

3

Distribuir en unidades

Distribuir en frasquitos de cristal de 5-10 ml, 3-4 ml por unidad. Sellar y etiquetar.

 

 

 

4

Proceso de congelacion gradual

Guardar en nevera (4 C) 30-60 minutos antes de pasar al congelador.

 

 

 

5

Congelar a -20 C

Pasar al congelador. No descongelar y recongelar – cada unidad es de uso unico.

 

 

 

6

Descongelacion para usar

Sacar la unidad del congelador. Dejar descongelar a temperatura ambiente sin acelerar. Inocular directamente o amplificar en nuevo LC.

 

 

 

 

 

BLOQUE 5

Tecnicas Avanzadas

 

Agar en placa * Clonacion * De agar a LC

 

 

 

12

 

AGAR, PLACAS PETRI Y CLONACION DE TEJIDO

Tipos * WA * MEA * PDA * Vertido * Trabajo en placa * Clonacion

 

 

 

CAPITULO 12

AGAR, PLACAS PETRI Y CLONACION DE TEJIDO

 

 

Tipos de placas * WA * MEA * PDA * Vertido * Trabajo en placa * Clonacion de tejido

 

 

D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos

 

 

 

El agar es donde ocurre la micologia avanzada. Ver el micelio en placa antes de comprometer grano o bulk transforma el cultivo de una apuesta a una decision informada.

 

 

 

PARTE 1 – Las Placas Petri: Tipos y Como Elegirlas

 

 

 

Tipo

Material

Esterilizable a 121C

Reutilizable

Para quien

 

Desechables estandar

Poliestireno (PS)

NO

NO

Principiantes y uso regular

 

Reutilizables

Polipropileno (PP)

Solo sin presion

SI (limitado)

Uso intermedio

 

Profesionales

Vidrio borosilicato

SI – autoclave completo

SI – indefinidamente

Uso intensivo

 

 

 

PARTE 2 – Los Medios de Agar

 

 

 

 

WA – Water Agar

 

Composicion:

Solo agar en polvo + agua destilada. Sin nutrientes.

 

Concentracion:

15-18 g de agar por litro de agua.

 

Uso:

Aislamiento y limpieza de sectores. Germinacion inicial desde esporas.

 

Ventaja:

Sin nutrientes: los contaminantes no tienen ventaja nutricional.

 

Limite:

Crecimiento muy lento. No indicado para diagnostico de viabilidad rapido.

 

 

 

 

MEA – Malt Extract Agar

 

Composicion:

Extracto de malta en polvo + agar bacteriologico + agua destilada.

 

Concentracion:

20 g de extracto de malta + 15 g de agar por litro de agua.

 

Uso:

El medio estandar para trabajo con psilocibios. Colonizacion rapida y vigorosa.

 

Ventaja:

Equilibrio perfecto entre nutricion y visibilidad. El mas versatil.

 

Limite:

Favorable para ciertos contaminantes tambien.

 

 

 

 

PDA – Potato Dextrose Agar

 

Composicion:

Extracto de patata + dextrosa + agar bacteriologico + agua destilada.

 

Concentracion:

200 g de patata + 20 g de dextrosa + 15 g de agar por litro.

 

Uso:

Clonacion de tejido. Diagnostico de viabilidad rapido. El mas nutritivo de los tres.

 

Ventaja:

Crecimiento maximo. Indica rapidamente si el micelio esta activo.

 

Limite:

El mas favorable para contaminantes. No usar para aislamiento fino.

 

 

 

PARTE 3 – Preparacion y Vertido de Placas

 

 

 

1

Preparar el medio

Pesar los ingredientes. Anadir el agar al agua fria. Calentar en un matraz agitando hasta que el agar se disuelva completamente.

 

 

 

2

Esterilizar el medio liquido

121 C / 15 PSI / 20 minutos. Dejar enfriar a 55-60 C antes de verter (cuando el matraz es manejable con la mano sin quemar).

 

 

 

3

Verter en SAB

Abrir la placa lo minimo posible. Verter rapidamente. 12-15 ml para placa de 90 mm.

 

 

 

4

Solidificacion

A temperatura ambiente en 15-20 minutos. No mover hasta que este completamente solido. Invertir las placas para que el agua caiga sobre la tapa, no sobre el agar.

 

 

 

5

Verificacion

Guardar las placas invertidas a temperatura ambiente 3-5 dias. Cualquier contaminacion sera visible. Descartar las placas con crecimiento extrano.

 

 

 

6

Sellar las placas verificadas

Parafilm 2-3 vueltas alrededor del borde. Guardar invertidas a 4 C. Duran 3-6 meses bien selladas.

 

 

 

PARTE 4 – Inoculacion de Placas

 

 

 

1

Flamear el asa

Hasta rojo vivo, 4-5 segundos. Enfriar 10-15 seg tocando el borde del agar sin colonizar.

 

 

 

2

Rascar esporas del sello

Cantidad minima – con lo que queda en la punta es suficiente.

 

 

 

3

Distribuir en la placa

Abre la placa lo MINIMO posible – 1-2 cm. Deposita haciendo una linea en zigzag o en espiral.

 

 

 

4

Cerrar y sellar

Inmediatamente. Etiquetar con especie, cepa y fecha.

 

 

 

PARTE 5 – Lectura de Placas

 

 

 

Ilumina la placa desde el lado con una linterna – la luz rasante revela la textura del micelio mucho mejor que la luz cenital.

 

 

 

Lo que ves

Significado

Accion

 

Crecimiento denso, regular, avanzando en todas las direcciones

Micelio sano y vigoroso

Candidato a transferir o clonar

 

Micelio rizomorfoso – cordones gruesos con ramificaciones

Sector de alto rendimiento

Candidato prioritario

 

Velocidad de avance superior al resto de la placa

Genetica agresiva y competitiva

Transferir a placa nueva y expandir

 

Crecimiento irregular con zonas casi vacias

Sector degenerado o debilitado

Evitar – no transferir

 

Cualquier color no blanco

Contaminacion

Descartar la placa

 

Agar licuandose u olor fetido al abrir

Contaminacion bacteriana

Descartar inmediatamente

 

 

 

PARTE 6 – Trabajo con Placas Inoculadas

 

 

 

1

Flamear correctamente el bisturi

Hoja entera hasta rojo vivo, 4-5 segundos. Esperar 10-15 segundos. Tocar brevemente el agar sin colonizar del borde para verificar que no quema.

 

 

 

2

Corte limpio y decidido

No serres ni arrastres. Un corte de arriba abajo. El trozo debe tener 0.5-1 cm2.

 

 

 

3

Transferir siempre desde el frente activo

Los bordes mas avanzados del micelio. NUNCA desde el centro ya colonizado.

 

 

 

4

Depositar boca abajo

La superficie colonizada en contacto directo con el agar nuevo.

 

 

 

5

Cerrar y sellar inmediatamente

Parafilm 2-3 vueltas. Etiquetar con origen, fecha y numero de generacion.

 

 

 

PARTE 7 – Clonacion de Tejido

 

 

 

Clonar tejido es tomar un fragmento del interior carnoso de un carpoforo maduro y cultivarlo en agar. El micelio resultante es geneticamente identico al donante.

 

 

 

Criterio del donante

Por que importa

 

Primer o segundo flush

Mayor vigor genetico. Los tardios dan clones mas debiles.

 

Colonizacion rapida

Si aparecio antes que los demas: genetica de alto rendimiento.

 

Azulado intenso al cortar

Alto contenido en psilocibina/psilocina.

 

Sin signos externos de contaminacion

Cualquier mancha descalifica el ejemplar.

 

 

 

1

No lavar el carpoforo con agua

El agua introduce contaminantes.

 

 

 

2

Desinfectar el exterior

Algodon con alcohol 70% por toda la superficie exterior.

 

 

 

3

Secar con papel absorbente esteril

El alcohol residual puede inhibir el micelio en el agar.

 

 

 

4

Rajar longitudinalmente – en SAB

Con bisturi flameado y enfriado. Corte limpio y rapido.

 

 

 

5

Extraer 3-5 mm del interior

Nunca de la superficie exterior aunque este desinfectada. Punto optimo: la union entre el tallo y el sombrero.

 

 

 

6

Depositar en el centro del agar boca abajo

Cara de corte en contacto con el agar. Presion suave para asegurar contacto.

 

 

 

7

Cerrar, sellar y etiquetar

Parafilm 2-3 vueltas. Especie, cepa, fecha, flush, numero de bloque.

 

 

 

PARTE 8 – De Agar a LC

 

 

 

Ventaja

Respecto a inocular desde esporas

 

Velocidad

El micelio activo coloniza el LC en 3-7 dias vs 7-14 desde esporas.

 

Certeza

Has visto crecer ese micelio. Sabes que es limpio y vigoroso.

 

Seleccion genetica

Llevas exactamente el genotipo del sector que elegiste en placa.

 

Multiplicacion

De una placa puedes inocular varios LC y de ahi varios frascos de grano.

 

 

 

1

Identificar el mejor sector en la placa

Ilumina desde el lado con linterna. Busca el frente activo mas vigoroso.

 

 

 

2

Flamear el bisturi

Hasta rojo vivo, 4-5 segundos. Enfriar tocando agar sin colonizar del borde.

 

 

 

3

Cortar 2-3 trozos de agar colonizado

De 0.5-1 cm2 cada uno, del frente activo. Varios trozos distribuyen mejor el inoculo.

 

 

 

4

Abrir el frasco de LC lo minimo posible

Introduce los trozos directamente en el LC.

 

 

 

5

Cerrar y agitar suavemente

Sellar inmediatamente. Movimientos circulares suaves para distribuir los fragmentos.

 

 

 

6

Incubar

23-26 C para cubensis, 28-30 C para cyanescens. Agitacion manual una vez al dia.

 

 

 

Errores Frecuentes en Agar

 

 

 

Intentar esterilizar placas con agar ya solidificado

 

El agar vuelve a licuarse a 121 C, se derrama y solidifica con superficie irregular. El orden es siempre: esterilizar el agar liquido en el matraz, enfriar, verter en placas.

 

 

 

Agar alimentario en vez de bacteriologico

 

Diferente poder gelificante y pureza. El resultado es un agar blando o turbio.

 

 

 

Esterilizar mas de 30 minutos

 

El agar se degrada con esterilizaciones largas – se vuelve turbio y gel mas blando.

 

 

 

 

 

BLOQUE 6

Especies Avanzadas y Postcosecha

 

P. cyanescens * P. natalensis * P. azurescens * Secado

 

 

 

13

 

PANAEOLUS CYANESCENS (COPELANDIA)

Guia completa * Sustrato de estiercol * Casing layer detallado

 

 

 

CAPITULO 13

PANAEOLUS CYANESCENS (COPELANDIA)

 

 

Guia completa * Sustrato de estiercol * Casing layer detallado

 

 

D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos

 

 

 

Panaeolus cyanescens es un hongo corofilo tropical considerablemente mas exigente que P. cubensis. Su potencia es 2-3 veces mayor, pero requiere estiercol como sustrato obligatorio, temperaturas mas altas en colonizacion y humedad extrema y constante en fructificacion. No es una especie para principiantes.

 

 

 

Parametro

P. cubensis

P. cyanescens

 

Dificultad

Principiante

Intermedio-avanzado

 

Sustrato base

CV (coco+vermiculita)

Estiercol obligatorio

 

Temp. colonizacion

23-26 C

28-30 C

 

Temp. fructificacion

18-23 C

23-26 C

 

Humedad fructificacion

90-95%

95-98% (critico)

 

Sensibilidad contam.

Media

Alta

 

Vel. colonizacion grano

14-21 dias

21-28 dias

 

Potencia relativa

Referencia (1x)

2-3x mayor

 

Pinning

Relativamente facil

Caprichoso, exige precision

 

 

 

PARTE 1 – Preparacion del Sustrato de Estiercol

 

 

 

Opcion A

Estiercol de caballo + coco + vermiculita

 

Componente: Estiercol de caballo pasteurizado

60% – Fuente nutritiva principal. El mas equilibrado.

 

Componente: Fibra de coco hidratada

30% – Retencion de humedad y estructura fisica del sustrato.

 

Componente: Vermiculita grado medio

10% – Drenaje y aireacion. Evita encharcamiento.

 

Nota:

La mas equilibrada. El estiercol de caballo tiene mejor aireacion natural y es mas facil de manejar.

 

 

 

Opcion B

Estiercol de vaca + paja + vermiculita

 

Componente: Estiercol de vaca pasteurizado

70% – Fuente nutritiva principal. Mas denso y nutritivo que el de caballo.

 

Componente: Paja de trigo picada fina

20% – Estructura adicional y fuente de celulosa.

 

Componente: Vermiculita

10% – Drenaje.

 

Nota:

El estiercol de vaca es mas nutritivo pero mas denso y propenso al encharcamiento.

 

 

 

Opcion C

Estiercol deshidratado de vivero + coco + vermiculita

 

Componente: Estiercol deshidratado

50% – Fuente nutritiva. Ya curado – sin amoniaco.

 

Componente: Fibra de coco hidratada

40% – Humedad y estructura.

 

Componente: Vermiculita

10% – Drenaje.

 

Nota:

La opcion mas accesible para quien no tiene acceso a estiercol fresco.

 

 

 

Preparacion del estiercol fresco – eliminacion del amoniaco

 

1

Extender en capa fina al aire libre 3-7 dias removiendo diariamente

El amoniaco se volatiliza progresivamente.

 

 

 

2

Verificar ausencia de amoniaco

Senal de listo: sin olor a amoniaco. Olor a tierra humeda.

 

 

 

3

Pasteurizar a 80 C / 60-90 min

El mismo proceso que el CV. NO esterilizar.

 

 

 

4

Enfriar completamente – minimo 12 horas

El sustrato caliente mata el micelio del spawn.

 

 

 

PARTE 2 – Inoculacion del Estiercol

 

 

 

Parametro

Valor

 

Ratio spawn:sustrato

1:2 maximo – no experimentar con ratios mas bajos de spawn

 

Temperatura de inoculacion

Sustrato frio. Temperatura ambiente.

 

Donde inocular

En SAB igual que con cubensis.

 

 

 

PARTE 3 – Colonizacion del Grano

 

 

 

Parametro

Valor

 

Temperatura

28-30 C (estricto)

 

Luz

Oscuridad total

 

Riego

Ninguno – no abrir

 

Tiempo estimado

21-28 dias

 

 

 

La principal diferencia con cubensis: la temperatura de colonizacion del grano es critica. A 23 C el micelio de cyanescens avanza tan despacio que la contaminacion suele ganar. Necesitas 28-30 C de forma estable.

 

 

 

PARTE 4 – El Casing Layer – Obligatorio para Cyanescens

 

 

 

A diferencia de cubensis donde el casing es opcional, en cyanescens es obligatorio. Sin capa de cobertura el pinning es inconsistente o inexistente.

 

 

 

Mezcla

pH aproximado

Valoracion

 

Turba + cal hidratada 10:1 (ajustado)

7.0-7.5

OPTIMA – la mas recomendada.

 

Fibra de coco + cal hidratada 10:1

6.5-7.0

Aceptable si no encuentras turba.

 

Vermiculita ligeramente humeda

Variable

Funciona pero menos efectiva para el pinning.

 

 

 

1

Pasteurizar el casing

80 C / 60 minutos. Enfriar completamente.

 

 

 

2

Aplicar sobre bloque 100% colonizado

Capa uniforme de 1-1.5 cm. Mas de 2 cm hace que los pins no lleguen a la superficie.

 

 

 

3

Pulverizar las paredes

No el casing directamente. Agua destilada o hervida fria.

 

 

 

4

Esperar pins

3-10 dias. Mantener HR al 95-98%.

 

 

 

PARTE 5 – Fructificacion

 

 

 

Parametro

Colonizacion

Fructificacion

 

Temperatura

28-30 C

23-26 C

 

Humedad rel.

Sin regar

95-98% (critico)

 

Luz

Oscuridad

Indirecta 12 h/dia

 

CO2 / FAE

Acumulado

3-4 ventilaciones/dia breves

 

 

 

Caracteristica

Descripcion

 

Tallo

Fino y largo, color crema a gris

 

Sombrero

Pequeno (1-4 cm). Marron claro cuando humedo, palido al secar

 

Azulado

Se azulean intensamente al manipular – senal de alta psilocibina/psilocina

 

Velo

Muy fino, casi imperceptible. Se rompe rapido.

 

 

 

Flush

Rendimiento relativo

Nota

 

1.

30-40% del total

Puede ser escaso si las condiciones no fueron perfectas

 

2.

35-45%

Suele ser el mas abundante en esta especie

 

3.

15-25%

Productivo si se mantiene la HR

 

4.+

Residual

Descartar bloque. Mayor riesgo de contaminacion

 

 

 

Errores Frecuentes con Cyanescens

 

 

 

Temperatura demasiado baja en colonizacion – causa n.1 de fracaso. A 23 C el micelio avanza tan despacio que la contaminacion gana.

 

 

 

HR insuficiente en fructificacion – los pins abortan masivamente. Sin sistema de control de humedad fiable, fracasaras consistentemente.

 

 

 

Sustrato sin estiercol – el CV solo produce resultados pobres o nulos. No hay sustituto para el estiercol en esta especie.

 

 

 

Casing demasiado grueso (+2 cm) – los pins no llegan a la superficie.

 

 

 

Impaciencia con el grano – 28 dias de colonizacion es normal, no es senal de contaminacion ni de fallo.

 

 

 

 

 

14

 

PSILOCYBE NATALENSIS

Natal Super Strength * Diferencias vs cubensis * Overlay * Natal snakes

 

 

 

CAPITULO 14

PSILOCYBE NATALENSIS GUIA COMPLETA DE CULTIVO

 

 

Natal Super Strength * Diferencias respecto a cubensis * Protocolo completo

 

 

D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos

 

 

 

FICHA DE LA ESPECIE

 

 

 

Dato

Informacion

 

Nombre cientifico

Psilocybe natalensis Gartz, Reid, M.T. Sm. & Eicker (1995)

 

Nombre comun

Natal Super Strength

 

Origen

Provincia de KwaZulu-Natal, Sudafrica. Elevacion 1.500 m.

 

Habitat natural

Pastizales abiertos y aridos sobre suelo fertilizado. Sin preferencia por estiercol directo.

 

Potencia

Alta – estimado 2x P. cubensis. 0,6-1,81% alcaloides totales.

 

Sello de esporas

Negro-violaceo – identico a cubensis

 

Azulado

Muy intenso – mas pronunciado que cubensis

 

 

 

DIFERENCIAS RESPECTO A P. CUBENSIS

 

 

 

Parametro

P. cubensis

P. natalensis

Impacto en cultivo

 

Temp. colonizacion

23-26 C

22-25 C

Diferencia minima – misma manta de calor

 

Temp. fructificacion

18-23 C

18-22 C

Ligeramente mas fria – no requiere cambios

 

Velocidad colonizacion

Normal

MAS RAPIDA – micelio muy agresivo

Coloniza antes, menos tiempo de riesgo

 

Resistencia contaminacion

Media

ALTA – micelio dominante

Mas tolerante a errores de tecnica

 

Pinning

Variable

Denso en racimos – clusters grandes

Cosechas mas densas

 

Potencia

Referencia base

Aprox. 2x cubensis

Ajustar dosis a la MITAD al inicio

 

Efecto corporal

Moderado – nauseas frecuentes

Limpio – menos carga corporal

Preferida para microdosis

 

Sensibilidad CO2

Normal

ALTA – muy sensible al CO2 acumulado

FAE mas activo obligatorio

 

 

 

SUSTRATO OPTIMO

 

 

 

Componente

Proporcion

Funcion

 

Fibra de coco hidratada

40%

Base – retencion de humedad

 

Vermiculita grado medio

20%

Drenaje y aireacion

 

Estiercol de caballo pasteurizado

40%

Nutricion extra – mejora pinning y densidad

 

 

 

PROTOCOLO COMPLETO – FASE A FASE

 

 

 

FASE FASE 1  —  Preparacion del grano

 

Identico a cubensis. Mismo proceso de lavado, remojo, coccion y esterilizacion. Mismos tiempos: 90 min a 121 C / 15 PSI. Diferencia: Sin cambios respecto a cubensis.

 

 

 

FASE FASE 2  —  Inoculacion

 

Misma tecnica – LC o jeringa de esporas. LC recomendado sobre jeringa de esporas. Cantidad: 3-5 ml de LC por frasco de 500 ml.

 

 

 

FASE FASE 3  —  Colonizacion del grano

 

Temperatura: 22-25 C. Micelio muy denso y rizomorfoso – coloniza rapidamente. El micelio de natalensis es notablemente mas grueso y rizomorfoso que cubensis. Tiempo: 10-18 dias.

 

 

 

FASE FASE 4  —  Mezcla spawn:bulk

 

Igual que cubensis. Ratio 1:2 recomendado. El micelio de natalensis es tan agresivo que tolera ratios de 1:3 sin problema.

 

 

 

FASE FASE 5  —  Colonizacion del bulk

 

Temperatura: 22-24 C. El micelio coloniza el bulk en 5-10 dias con buen spawn. Puede aparecer overlay – ver seccion especifica.

 

 

 

FASE FASE 6  —  Casing (opcional pero recomendado)

 

Mismo casing que cubensis: turba+cal 10:1. Mejora el pinning especialmente con natalensis porque estimula la formacion de clusters densos.

 

 

 

FASE FASE 7  —  Fructificacion

 

HR: 90-95%. Temperatura: 18-22 C. FAE: MAS ACTIVO que con cubensis – 3-4 ventilaciones al dia minimo.

 

 

 

EL OVERLAY EN NATALENSIS

 

 

 

Tipo de overlay

Aspecto

Que hacer

 

Overlay fino (bueno)

Capa blanca densa pero con textura irregular, como piel de cocodrilo

No actuar – los pins suelen romper esta capa. Es un buen overlay.

 

Overlay grueso (problematico)

Capa muy densa, compacta y lisa – sin textura. No hay signos de actividad de pinning.

Rascar con tenedor esteril + casing fresco encima + aumentar FAE.

 

 

 

LOS NATAL SNAKES

 

 

 

Aspecto

Causa y solucion

 

Tallos muy largos y finos sin sombrero, doblados y serpenteantes

CO2 acumulado – FAE insuficiente. Natalensis es mas sensible al CO2 que cubensis. Aumentar FAE inmediatamente a 5-6 ventilaciones al dia.

 

 

 

TABLA RESUMEN DE PARAMETROS

 

 

 

Parametro

P. cubensis

P. natalensis

 

Temp. colonizacion grano

23-26 C

22-25 C

 

Temp. colonizacion bulk

23-26 C

22-24 C

 

Temp. fructificacion

18-23 C

18-22 C

 

Humedad relativa fructificacion

90-95%

90-95%

 

FAE

2-3 ventilaciones/dia

3-4+ ventilaciones/dia

 

Overlay

Ocasional

Frecuente – vigilar

 

Natal snakes

No aplica

Posibles con FAE insuficiente

 

Potencia

Referencia

Aprox. 2x – ajustar dosis

 

 

 

Errores Frecuentes con Natalensis

 

 

 

Usar la misma dosis que con cubensis – la natalensis es aproximadamente el doble de potente. La primera vez usar exactamente la mitad de la dosis habitual.

 

 

 

FAE insuficiente – natal snakes. El CO2 acumulado produce tallos largos y finos sin sombrero.

 

 

 

No gestionar el overlay – el overlay grueso y liso bloquea el pinning indefinidamente.

 

 

 

Confundir el micelio grueso con contaminacion – los cordones densos y rizomorfosos de natalensis son su micelio sano.

 

 

 

 

 

15

 

PSILOCYBE AZURESCENS

Flying Saucers * La mas potente * Cultivo exterior * Camas de madera

 

 

 

CAPITULO 15

PSILOCYBE AZURESCENS GUIA COMPLETA DE CULTIVO EXTERIOR

 

 

Flying Saucers * La mas potente documentada * Camas de madera * Proceso completo

 

 

D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos

 

 

 

P. azurescens es un proceso COMPLETAMENTE DIFERENTE a cubensis y natalensis. No es un ajuste de parametros – es otra forma de cultivar. Sustrato de madera, cultivo exterior, temperaturas de frio otonal, meses de espera. Leer este capitulo completo antes de empezar.

 

 

 

FICHA DE LA ESPECIE

 

 

 

Dato

Informacion

 

Nombre cientifico

Psilocybe azurescens Stamets & Gartz (1995)

 

Nombres comunes

Flying Saucers, Azure, Azzies

 

Descubierta

1979 por Paul Stamets cerca de Astoria, Oregon (EEUU)

 

Origen

Costa del Pacifico Noroeste de EEUU – habitat de dunas costeras

 

Potencia

MUY ALTA – 1,0-2,4% alcaloides totales. La mas potente documentada.

 

Psilocibina

Hasta 1,78% en peso seco – 3x la media de cubensis

 

Morfologia

Sombrero convexo a plano, marron-caramelo a dorado. Borde ondulado caracteristico. Velo muy fino.

 

Habitat natural

Arenas costeras con detritos de madera. Fructifica de septiembre a enero.

 

Azulado

EXTREMADAMENTE intenso – el mas pronunciado del genero

 

 

 

DIFERENCIAS RADICALES RESPECTO A P. CUBENSIS

 

 

 

Parametro

P. cubensis

P. azurescens

Impacto

 

Donde se cultiva

Interior – frascos y camaras

EXTERIOR – camas de madera

Proceso completamente diferente

 

Sustrato

Grano + CV o estiercol

Astillas de madera de arbol duro

Sin grano, sin CV

 

Temp. colonizacion

23-26 C

16-21 C

Temperatura de otono-invierno

 

Temp. fructificacion

18-23 C

7-16 C – FRIO

Necesita el frio real del otono

 

Tiempo total

4-8 semanas

4-8 MESES

Proceso de temporada completa

 

Esterilizacion sustrato

Obligatoria (121 C)

NO – astillas sin tratar

Solo humedecer las astillas

 

Potencia

Referencia base

Hasta 3x cubensis

Ajustar dosis drasticamente

 

 

 

REQUISITOS DEL LUGAR

 

 

 

Requisito

Descripcion

Por que importa

 

Sombra parcial o total

Nunca sol directo. Bajo arboles, junto a muros norte.

El sol directo seca las astillas y degrada el micelio.

 

Temperatura otonal fria

La zona debe alcanzar 7-16 C de forma natural en otono-invierno.

El frio es el trigger de fructificacion. Sin frio: no hay hongos.

 

Proteccion del viento

Junto a setos, muros o estructuras que reduzcan el viento.

El viento seca las astillas rapidamente.

 

Acceso a agua

Cerca de una toma de agua para regar en periodos secos.

Las astillas deben mantenerse humedas pero no encharcadas.

 

Suelo permeable

Evitar zonas de acumulacion de agua.

El agua estancada es anaerobia y favorece contaminacion bacteriana.

 

 

 

PROCESO COMPLETO – PREPARACION DE LA CAMA

 

 

 

1

Preparar el grano spawn

Identico al proceso de cubensis – lavar, cocer, secar, esterilizar 121 C / 15 PSI / 90 min. DIFERENCIA CLAVE: temperatura de colonizacion 16-21 C. Necesitas zona fresca, no el mat de calor. Tiempo de colonizacion: 3-5 semanas.

 

 

 

2

Inocular el grano con spawn de azurescens

LC o jeringa de esporas de azurescens en SAB. TEMPERATURA DE COLONIZACION: 16-21 C.

 

 

 

3

Expansion en carton – paso intermedio

Una vez el grano este 100% colonizado, romperlo en trozos pequenos y mezclarlo con carton humedecido en un contenedor. El micelio coloniza el carton en 1-2 semanas.

 

 

 

4

Preparacion de las astillas de madera

Humedecer las astillas de madera abundantemente el dia antes de usarlas. NO esterilizar ni pasteurizar las astillas. La microbiota natural de la madera es parte del ecosistema que necesita azurescens.

 

 

 

5

Elegir y preparar el lugar

Zona con sombra parcial o total. Retirar cualquier hierba o planta en la zona de la cama.

 

 

 

6

Primera capa – astillas humedas

Extender una capa de 5-8 cm de astillas humedas sobre el suelo. Esta es la base de la cama.

 

 

 

7

Capa de spawn

Distribuir el spawn colonizado sobre la capa de astillas. Ratio aproximado: 1 litro de spawn por metro cuadrado de cama.

 

 

 

8

Segunda capa de astillas

Cubrir el spawn con otra capa de 5-8 cm de astillas humedas. Total: 12-18 cm de profundidad.

 

 

 

9

Cubrir para mantener la humedad

Cubrir la cama con una capa fina de hojas secas o carton humedo para reducir la evaporacion.

 

 

 

SEGUIMIENTO Y FRUCTIFICACION

 

 

 

Periodo

Lo que ocurre

Tu intervencion

 

Semanas 1-4 tras instalar

Micelio estableciendose – invisible desde fuera

Mantener humedad. No tocar.

 

Mes 2

Filamentos blancos visibles bajo la superficie

Mantener humedad. No remover.

 

Mes 3-4

Cama completamente colonizada

Esperar la temporada de frio.

 

Primer frio otonal

Los primeros carpoforos emergen

Monitorear diariamente. Cosechar en el momento optimo.

 

 

 

Parametro

Valor optimo

Nota

Temperatura fructificacion

7-16 C – optimo 10-15 C

El frio es el trigger. Sin temperaturas por debajo de 16 C no fructifica.

Humedad del suelo

Alta – astillas humedas constantemente

Regar si hay periodo seco prolongado.

Temporada natural

Septiembre-Enero en Europa

Depende del clima local.

 

 

COSECHA Y POSTCOSECHA

 

 

 

10

Identificar el momento optimo

Sombrero convexo a plano pero sin abrirse completamente. Velo tensandose pero aun intacto. ATENCION: el velo de azurescens es muy fino y se rasga antes que cubensis.

 

 

 

11

Tecnica de cosecha

Girar ligeramente la base del tallo y tirar hacia arriba. No cortar – los munones pueden contaminar.

 

 

 

12

Secado urgente

Secar inmediatamente tras la cosecha. Pre-secado 2-4 h con ventilador. Secado final con silica gel 24-48 h hasta test del cracker.

 

 

 

Errores Frecuentes con Azurescens

 

 

 

Intentar cultivar en interior con las mismas condiciones que cubensis – azurescens necesita temperaturas de frio real (7-16 C) para fructificar.

 

 

 

Esterilizar o pasteurizar las astillas – las astillas no se tratan termicamente. La microbiota natural de la madera es parte del ecosistema que necesita esta especie.

 

 

 

Usar madera de coniferas – pino, abeto, cipres. Los terpenos de las coniferas inhiben el crecimiento del micelio. Usar exclusivamente madera de hoja caduca.

 

 

 

Impaciencia – esperar resultados en semanas. El proceso de azurescens es de meses.

 

 

 

No ajustar la dosis – azurescens puede ser hasta 3 veces mas potente que cubensis. Empezar con la tercera parte de la dosis habitual.

 

 

 

 

 

16

 

SECADO Y CONSERVACION DE LA COSECHA

Pre-secado * Metodo A B C * Test del cracker * Largo plazo

 

 

 

CAPITULO 16

SECADO Y CONSERVACION DE LA COSECHA

 

 

Pre-secado * Metodo A B C * Test del cracker * Largo plazo

 

 

D.F.F.G · Guia Definitiva de Cultivo de Hongos

 

 

 

El secado es el paso final y uno de los mas criticos. Las setas mal secadas pierden potencia, se contaminan con moho y son peligrosas para preparaciones como la miel azul.

 

 

 

 

Setas bien secas

Setas con humedad residual

 

Duracion

1-2 anos en conservacion adecuada

Dias o semanas antes de contaminarse con moho

 

Psilocina

Estable en oscuridad y frio

Se degrada rapidamente – perdida de potencia

 

Miel azul

Seguras – sin riesgo Clostridium

Peligrosas – riesgo Clostridium botulinum

 

Dosificacion

Facil de pesar con precision

Peso variable – imposible dosificar con consistencia

 

 

 

PASO 1 – Pre-secado (Siempre Obligatorio)

 

 

 

El pre-secado elimina el 60-70% de la humedad superficial antes del secado final. Sin pre-secado el desecante (silica gel) se satura en horas sin completar el secado.

 

 

 

1

Limpiar las setas recien cosechadas

Retirar con cuidado cualquier resto de sustrato del pie con un pincel seco o papel. No mojar nunca las setas para limpiarlas.

 

 

 

2

Cortar en laminas – opcional pero recomendado

Cortar los sombreros y tallos en laminas de 0,5-1 cm. Aumenta la superficie de evaporacion y acelera significativamente el secado.

 

 

 

3

Extender en capa fina

Sobre papel de cocina, rejilla metalica o bandeja de horno. En una sola capa – sin apilar ni superponer.

 

 

 

4

Aplicar corriente de aire suave

Un ventilador pequeno apuntando cerca. NO usar calor directo – el calor degrada la psilocina por encima de 40-45 C.

 

 

 

5

Duracion del pre-secado

2-4 horas para setas en laminas. 4-8 horas para setas enteras pequenas. 8-12 horas para setas grandes enteras. Senal: la superficie ya no esta pegajosa al tacto.

 

 

 

PASO 2 – Secado Final (Elegir Metodo A, B o C)

 

 

 

METODO
A

Silica gel en recipiente hermetico – el metodo estandar

 

Proceso:

Colocar una capa de 3-5 cm de silica gel en el fondo de un tupper hermetico grande. Poner una rejilla o papel de cocina encima para que las setas no toquen la silica directamente. Extender las setas pre-secadas en una sola capa. Cerrar hermeticamente. Dejar 24-48 horas sin abrir.

 

Ventaja:

Sin electricidad, sin ruido, sin supervision. La silica es regenerable – meter al horno a 120 C durante 2-3 horas cuando este saturada. El metodo mas seguro y consistente para uso domestico.

 

Limite:

Mas lento que el deshidratador. Si no se hizo pre-secado la silica se satura antes de terminar el secado.

 

Tiempo:

24-48 horas para setas bien pre-secadas. Hasta 72 horas para setas grandes.

 

 

 

METODO
B

Silica gel con ventilador – metodo acelerado

 

Proceso:

Igual que el metodo A pero con un pequeno ventilador USB dentro de una caja cerrada, circulando el aire continuamente sobre las setas y la silica.

 

Ventaja:

Reduce el tiempo de secado a la mitad respecto al metodo A. Mismo nivel de seguridad.

 

Limite:

Necesita ventilador USB y algo de ingenio para montar el sistema.

 

Tiempo:

12-24 horas para setas bien pre-secadas.

 

 

 

METODO
C

Deshidratador electrico – el metodo mas rapido

 

Proceso:

Usar un deshidratador de alimentos con control de temperatura. Temperatura maxima: 45 C – NUNCA superar este valor. Extender las setas en las bandejas en una sola capa.

 

Ventaja:

El metodo mas rapido disponible. Resultado muy uniforme. Ideal para cosechas grandes.

 

Limite:

Necesita deshidratador – 30-80 EUR. Temperatura debe mantenerse por debajo de 45 C obligatoriamente.

 

Tiempo:

4-8 horas a 40-45 C dependiendo del tamano y cantidad.

 

 

 

PASO 3 – El Test del Cracker – La Unica Confirmacion

 

 

 

El test del cracker es la unica forma de confirmar que el secado esta completo. No existe alternativa. Las setas que parecen secas pero no pasan el test tienen humedad residual que las hara deteriorarse en conservacion.

 

 

 

CORRECTO – listo para guardar

MAS SECADO – devolver al desecante

 

Al doblar con los dedos cruje y se parte limpiamente en dos. Interior seco y palido. Sin flexibilidad ni elasticidad.

Dobla sin crujir. Se siente ligeramente elastico o flexible. Devolver al recipiente con silica 12-24 horas mas.

 

 

 

CONSERVACION A LARGO PLAZO

 

 

 

Metodo

Duracion

Condiciones

Notas

Bote de vidrio hermetico + nevera

12-18 meses

4 C, oscuridad total

El mejor para uso regular. Anadir sobrecito de silica dentro del bote.

Bote de vidrio hermetico + temperatura ambiente

6-12 meses

Oscuridad, temperatura estable <20 C

Funciona bien en invierno. En verano usar nevera.

Bote de vidrio + congelador

2-3 anos

-18 C, oscuridad

Maxima duracion. Descongelar el bote cerrado antes de abrir.

Bolsa zip + camara de fotos seca

6-12 meses

Oscuridad, silica gel en la camara

Opcion discreta.

 

FACTORES QUE DEGRADAN LA POTENCIA

 

Factor

Efecto

Como evitarlo

Luz UV y luz solar directa

Degrada la psilocina rapidamente – perdida de potencia en semanas

Vidrio ambar o verde oscuro. Oscuridad total.

Humedad

Activa mohos y bacterias – perdida de potencia y contaminacion

Silica gel dentro del bote. Test del cracker antes de guardar.

Calor sostenido (>25 C)

Degrada los alcaloides progresivamente

Nevera o lugar fresco estable.

Oxigeno

Oxida la psilocina – azulado progresivo en conservacion

Bote hermetico. Abrir el minimo imprescindible.

 

Errores Frecuentes en Secado

 

Saltarse el pre-secado

La silica gel se satura en horas con setas muy humedas y el secado queda incompleto. 2-4 horas de pre-secado con ventilador son siempre necesarias.

 

Usar el horno aunque sea al minimo

El horno domestico a minima temperatura suele estar a 60-80 C – muy por encima del limite de 45 C para la psilocina. Nunca usar el horno para secar setas.

 

No hacer el test del cracker

Las setas que se doblan en lugar de crujir tienen humedad residual. El test es obligatorio.

 

Guardar sin silica dentro del bote

Aunque las setas esten bien secadas al guardar, la apertura del bote introduce humedad ambiental cada vez.

 

 

GUIA DEFINITIVA DE CULTIVO DE HONGOS  *  D.F.F.G  *  Caracter informativo y educativo

 


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